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1. COLEGIO DE POSTGRADUADOS INSTITUCIÓN DE ENSEÑANZA E INVESTIGACIÓN EN CIENCIAS AGRÍCOLAS H. Cárdenas, Tabasco; a 13 de Octubre del 2025 PRESENTA: Iván De Jesús Cruz León PAT-619 BIOTECNOLOGIA VEGETAL Dra. Nydia del Rivero Bautista TEMA: EMBRIOGENESIS SOMATICA EN COCOTERO ( Cocos nucifera L.) CICLO: OTOÑO

2. Introducción (SADER,2023) El cocotero ( Cocos nucifera L.) es un cultivo tropical de gran valor económico. Sin embargo, en México la producción ha disminuido notablemente debido al envejecimiento de las plantaciones, enfermedades como el amarillamiento. Mientras Indonesia, Filipinas e India concentran más del 70 % de la producción mundial de coco, México apenas aporta alrededor del 2 %, con una producción cercana a 1.3 millones de toneladas anuales. La embriogénesis somática surge como una alternativa biotecnológica para regenerar y multiplicar plantas élite, mejorar el rendimiento y fortalecer la producción de coco en el país.

3. Planteamiento del problema Baja eficiencia de embriogénesis somática en cocotero, lo que limita la micropropagación a escala comercial. ¿Que se busca ? Se busca una estrategia simple y reproducible que permita aumentar el número y sincronía de embriones somáticos (en particular embriones tipo torpedo, más desarrollados) mejorar la ganancia de biomasa, sin complejas modificaciones de medio o hormonas.

4. Subdivisión de callos embriogénicos callos embriogénicos 3 meses = 90 días para su generación 3 meses: 1/2 = 2 callos 1/ 4 =4 callos 1/8 = 8 callos Menos embriones somáticos Mas embriones somáticos

5. Objetivos Evaluar el efecto del número de subdivisiones del CE (0, 2, 4 y 8 partes) sobre el número y tipo de embriones somáticos a los 15 y 30 días. Determinar la interacción entre subdivisión del CE (CE vs SCE) y la presencia/ausencia de fitohormonas (2,4-D + BAP) sobre: (a) número de E mbriones somáticos y (b) peso fresco. Describir histológica y morfológicamente las diferencias entre CE y SCE durante la formación de ES (a 15 y 30 días).

6. Metodología

7. Material vegetal (explante) Explante y origen : P lúmulas del genotipo Enano Malayo Verde Medios de inducción para los callos: Medio Y3 suplementado con 2,4-D 0.55 mM (fase de inducción previa) callos embriogénicos (CE) : Los callos se o btuvieron tras 3 meses de cultivo en oscuridad , 27 ± 2 °C .

8. Estrategia utilizada para incrementar la eficiencia de regeneración de cocotero in vitro mediante embriogénesis somática Estudio Histológico/morfológico

9. RESULTADOS Figura 2. Resultados de la primera fase , (generación de callos). Se muestra el explante vegetal original de Enano Malayo Verde. Obtención de la formación de callos a los 90 días con un peso fresco de 0.10–0.14 g. Secreción de callos de buena calidad seleccionados para realizar la subdivisión.

10. A los 15 días SCE-4 mostró ~15.66 ES , frente a ~4.56 ES en control (CE íntegro) — lo que representa un aumento de ≈3.36 veces respecto al control en los primeros 15 días. Promedio global (15 y 30 días): SCE-4 = 13.58 ES por frasco, vs Control = 4.01 ES . Resultado objetivo 1 (efecto del número de subdivisiones) ANOVA mostró diferencias significativas entre tratamientos; la prueba DMS p<0.05 indicó que SCE-4 fue estadísticamente superior a los otros tratamientos ,con un p<0.05 = 1.69 en ese análisis). El mayor número de embriones somáticos:

11. Resultado objetivo 2 :Numero de embriones somáticos (interacción subdivisión × fitohormonas) Interpretacion : L a subdivisión aumentó la respuesta incluso sin aplicaciones adicionales de 2,4-D y BAP (Fitohormonas) en Etapa II ,(al menos en los primeros 15–30 días). Esto sugiere que la herida/fragmentación promueve división celular, disponibilidad de nutrientes y probablemente estimulación endógena de fitohormonas.

12. Resultado objetivo 2 : Peso fresco (interacción subdivisión × fitohormonas) Peso fresco : En particular SCE −F mostró un incremento de 10 veces su peso fresco inicial y un aumento de ≈2.36 veces respecto al CE +F a los 30 días.

13. se presenta un CE a los 15 días de cultivo e histología del CE. observándose ES globulares ( esg ). vemos una zona meristemática ( zm ) de un ES donde se origina la raíz. En D se muestra un grupo de ES torpedo ( est ) originados de SCE a los 15 días de cultivo, los cuales se observan sincronizados y en el corte histológico se observan ES tipo torpedo ( est ) elongados y fusionados. Se observan ES globulares ( esg ) observados en menor cantidad. se muestra el CE a los 30 días de cultivo. Resultado objetivo 3 : (Análisis Histológicos y Morfológicos )

14. El corte histológico mostrando ES globulares ( esg ). se presentan grupos de ES tipo torpedo en SCE a los 30 días de cultivo. En algunos casos fue visible la raíz (r), un poro germinativo ( pg ) y coleóptilo (c). En J se observa un corte histológico de un ES con meristemo apical ( ma ). En la Figura K se muestra un corte histológico de un ES tipo torpedo ( est ) a los 30 días, observándose solamente la zona meristemática donde se origina la raíz. Por último en L se presenta un grupo de ES en desdiferenciación ( esd ).

15. Conclusiones La subdivisión del callo embriogénico en 4 piezas favoreció significativamente la formación de embriones somáticos tipo torpedo en las primeras dos semanas de cultivo, incluso en ausencia de fitohormonas en la etapa de formación. Estos resultados establecen una base práctica para aumentar el rendimiento de embriones somáticos en cocotero y pueden facilitar la multiplicación a gran escala de palmas híbridas o élite.

16. Referencia Bibliográfica Azpeitia Morales, A., Chan, J. L., Sáenz Carbonell, L., & Oropeza Salin, C. (2009). Influencia de la subdivisión del callo embriogénico en la formación de embriones somáticos de cocotero ( Cocos nucifera L.). Agricultura Técnica en México, 35 (1), 39-48. Recuperado de https://www.scielo.org.mx/scielo.php?pid=S0568-25172009000100004&script=sci_arttext

17. Gracias por su atención