Rhabdovirus pres

Clase Del Dr Francisco Arocha Universidad Del Zulia

1. REPÚBLICA BOLIVARIANA DE VENEZUELA
LA UNIVERSIDAD DEL ZULIA
FACULTAD DE MEDICINA
ESCUELA DE MEDICINA
CATEDRA: BACTERIOLOGÍA Y VIROLOGÍA
Taller No. 26
DR: FRANCISCO AROCHA
SANDOVAL

2. Familia: Rhabdoviridae

Géneros: Lyssavirus
Vesiculovirus
Ephemerovirus
Cytorhabdovirus

Nucleorhabdovirus

3. Familia RHABDOVIRIDAE
Orden Mononegavirales
Géneros
Lissavirus
(virus de la Rabia)
SilvestresDomésticos
Ephemerovirus
Fiebre Efímera
Bovina
Virus Estomatitis
Vesiculosa. VSV
Vesiculovirus
Virus
estomatitis
vesiculosa
TAXONOMÍA

4. ORDEN
Mononegavirales
FAMILIA
Rabdoviridae
GÉNERO
Lyssavirus
ESPECIES
Rabia
CEPAS
Virus calle
Virus fijo
Cepas de Europa
Central
Cepas de Asia
- Tailandia
- Madagascar
Cepas de África
- Mokola
- Lagos bat
- Duvenhage
- Obodhiang
- Kotonkan
Cepas de
murciélagos
HUÉSPED DONDE SE HA
PRODUCIDO EL AISLAMIENTO
Perros y gatos
Animales de laboratorio
Roedores
Tejidos de musaraña
Cerebro de murciélago
Cerebro de hombre
Tejidos de artrópodos
Tejidos de artrópodos
Murciélago europeo 1 y 2
Murciélago australiano
TAXONOMÍA DEL VIRUS
DE LA RABIA

5. ESTRUCTURA
COMPOSICIÓN
PROPIEDADES ANTIGÉNICAS
REPLICACIÓN
REACCIÓN FRENTE A LOS AGENTES
QUÍMICOS Y FÍSICOS

6. Forma de bala
Mide de 130 a 240 por 65 a 80 nm
Envoltura constituida por una capa de
lípidos (en su superficie posee proteínas
estructurales: G, M1, M2, N, NS y L)
Virión pleomórfico

7. VIRUS DE LA RABIA
Estructura Interna del Virus
Envoltura
(membrana)
Proteína matriz Glicoproteína
Ribonucleoproteína
Envoltura
Ribonucleoproteína
Proteína
matriz
RNA

8. Envoltura
(membrana)
Proteína matriz
Glicoproteína
Ribonucleoproteína
Glicoproteína G
Forma puntas triméricas en
la superficie del virus.
- Principal determinante antigénico.
- Capaz de unirse a la célula.
- Actividad de hemaglutinina.
Proteína de la Matriz M
Soporte interno de membrana viral.
Inhibición de síntesis de ARN viral.
ESTRUCTURA

9. Envoltura
Ribonucleoproteína
Proteína
matriz
RNA
Genoma ARN de
cadena única
Sentido negativo
Contiene 5 genes
N-P-M-G-L
Promueve la
encapsidación
o empaquetamiento
del ARN
Permite la replicación
del genoma.
Nucleoproteína N
Polimerasa viral L
No es activa.
Fosfoproteína P
Actúa como cofactor de
la polimerasa
ESTRUCTURA

10. 1 Serotipo simple
Nucleoproteína
Glucoproteína
Antígeno S
(Soluble)
Antígeno V
(Viral)
ESTRUCTURA ANTIGÉNICA

11. Un solo serotipo del virus.
Existe diferencia entre las cepas de virus
aislados de las diferentes especies
(mapaches, zorros, perros, murciélagos). La
diferencia radica por los epítopos en
nucleoproteínas y glucoproteínas.
La glucoproteína viral induce anticuerpos
neutralizantes en los animales

12. Sobrevive al almacenamiento a 4 °C durante
semanas
Se inactiva por el CO2
Muere rápidamente por exposición a
los rayos UV y por calor
Sensible a los solventes de lípidos
(éter, 0.1% desoxicolato de sodio)
Sensible a la tripsina, detergentes y a un pH
extremo

13. Glicerina 50%
En
refrigeración
Putrefacción y
Cloroformo
•CO2
•LUV
•Luz solar
•Solventes
lipídicos
•Ph extremos
•Proteasas
•Otros
RESISTENCIA

14. ABSORCIÓNABSORCIÓN
PENETRACIÓNPENETRACIÓN
PERDIDA DE LA ENVOLTURAPERDIDA DE LA ENVOLTURA
TRANSCRIPCIÓNTRANSCRIPCIÓN
TRADUCCIÓNTRADUCCIÓN
PROCESAMIENTO DE GPROCESAMIENTO DE G
REPLICACIÓNREPLICACIÓN
ENSAMBLADOENSAMBLADO
GEMACIÓNGEMACIÓN

18. VIRUS DE LA RABIA
HISTORIA

19. VIRUS DE LA RABIA
HISTORIA
Adelchi, Negri (1903)
Chamberland y Thuilier
Emile Roux
(1853-1933)
Louis Pasteur
(1822-1895)
Instituto Pasteur

20. LOUIS PASTEURLOUIS PASTEUR

21. 50 Perros50 Perros
JOSEPH MEISTERJOSEPH MEISTER
6 DE JULIO DE18856 DE JULIO DE1885
VACUNA ADMINISTRADAVACUNA ADMINISTRADA
JEAN BAPTISTEJEAN BAPTISTE
JUPILLEJUPILLE
PRIMERA VACUNAPRIMERA VACUNA

22. Zoonosis viral, cuya importancia radica en
una letalidad cercana al 100%.
Infección viral aguda causada por un virus
neurotrópico, propia del sistema nervioso
central, transmitida por mordedura o
contacto directo de mucosas o heridas con
saliva del animal infectado.

23. Paralítica
ParalíticaFuriosaCLÍNICA
Modificado (vacunas)Productor de la
enfermedadPATOGENICIDAD
AusentesPresentes
CORPÚSCULOS DE
NEGRI
AtenuadaAcentuadaVIRULENCIA
Gl. Salivales
(exclusivo)Adenótropo
NeurótropoNeurótropoPODER INVASIVO
CortoProlongado
PERIODO DE
INCUBACIÓN
ArtificialNaturalORIGEN
Virus FijoVirus de la CalleCARACTERÍSTICA

24. VIRUS DE LA RABIA
Ciclo Biológico

25. El número anual de muertes mundial se encuentra
entre: 40.000 y 70.000
Estimado de 10 millones de personas reciben los
tratamientos de post-exposición cada año
Desde 1990 la rabia en la vida silvestre se ha
eliminado en algunos países desarrollados
Es difícil de evaluar su impacto en la salud humana
y animal

26. Se observa con mayor frecuencia en niños
menores de 15 años
Primariamente afecta a los animales,
ocasionalmente al hombre siendo fatal
Existen dos tipos de rabia: LA URBANA Y LA
SELVÁTICA

27. Transmisores
Urbanos
Selváticos

28. VECTORES
(escala de prevalecía).
0%
5%
10%
15%
20%
25%
30%
35%
40%
45%
50%
PERROS. GATOS Y
OTROS.
PERROS
MURCIÉLAGOS
GATOS, OTROS

29. CICLO
SELVÁTICO
CICLO
URBANO
EPIDEMIOLOGÍA

30. EPIDEMIOLOGÍA
CICLO SELVÁTICO

31. RABIA EN
MURCIÉLAGOS
RABIA CARNÍVORA
SILVESTRE
EPIDEMIOLOGÍA
CICLO SELVÁTICO

32. EPIDEMIOLOGÍA
CICLO URBANO

33. DIAS SOLEADOS Y CALUROSOS
EPIDEMIOLOGÍA
FACTORES AMBIENTALES

34. EPIDEMIOLOGÍA
FACTORES AMBIENTALES
NOCHES TRANQUILAS

35. •BOSQUES CON ABUNDANTE VEGETACIÓN
•TEMPERATURAS MEDIAS
•HUMEDAD BAJA
•BOSQUES CON ABUNDANTE VEGETACIÓN
•TEMPERATURAS ENTRE 15º C Y 25º C
•HUMEDAD RELATIVA ENTRE 85 Y 95%
ZORROS, LOBOS Y
COYOTES
MURCIÉLAGOS
HEMATÓFAGOS
EPIDEMIOLOGÍA
FACTORES AMBIENTALES

36. EPIDEMIOLOGÍA
FACTORES HUMANOS

37. EPIDEMIOLOGÍA
FACTORES HUMANOS

38. Mordedura del perro o del murciélago
Replicación en el músculo estriado
Se dirige al Sistema Nervioso Periférico
Asciende al Sistema Nervioso Central
Glándulas salivales
Medula suprarrenal
Riñón
Pulmón
Hígado
Músculo
esquelético
Piel
Corazón

40. VIRUS DE LA RABIA
Mordedura, arañazo o lamido de un animal infectado
Inhalación de aerosoles con el virus.
Transplante de tejidos infectados, por ejemplo Córnea
Inoculación directa del virus en mucosas intactas
Mecanismo de Penetración del Virus
Patogenia

41. PATOGENIA
Herida en cara o cuello:
Virus → tallo cerebral por nervios
craneales.
Infección en SNC.

42. PATOGENIA
Durante infección cerebral cambios
→
clásicos de comportamiento.
SNC diseminación hacia nervios
→
periféricos.
Virus invade corazón, páncreas,
riñón, retina, glándulas salivales.

43. PATOGENIA
Modo de transmisión más
comúnmordedura.
→
Principal vector perro.
→
Virus penetra por piel o mucosa.
Replicación en Musc. Esquelético.
Nervios Periféricos.(unión neuromusc.)
Por flujo axoplásmico retrógrado SNC
→
.

44. PATOGENIA
Mordedura en miembro:
Sitio de inoculación astas post. Por
→
nervio sensitivo.(flujo axoplásmico
retrógrado).
Replicación en ganglio dorsal.
Médula espinal infección rápida de
→
SNC.

45. VIRUS DE LA RABIA
Virus de la Virus de la
callecalle
Tiene la
capacidad de
invadir SNC y
glándulas
salivares
Períodos de
incubación
muy variables,
generalmente
prolongados.
Virus FijoVirus Fijo
Períodos de
incubación
muy breves,
generalmente
de 4 a 6 días.
Incapacidad
para invadir las
glándulas
salivares.
Patogenia

46. La enfermedad es una encefalomielitis vírica
aguda fulminante y mortal
*Fase prodómica
*Fase neurológica o encefalítica
*El coma
Los signos y síntomas más frecuentes
se dividen en tres fases:

47. VIRUS DE LA RABIA
Patología

48. VIRUS DE LA RABIA
PATOLOGIA
Puede ser:
 Período de Incubación Corto:
7 a 10 días.
 Período de Incubación Largo:
2 a 12 meses e incluso años
El período de incubación en el perro puede
durar de días a meses.
Duración del Período de Incubación

49. CLINICA hombre
Incubación: días a meses.
Herida cicatrizada inflamada y
→
dolorosa.
Fase Prodrómica 2 a 10 días.
→
Síntomas inespecíficos: malestar,
anorexia, cefalea, fiebre, ansiedad,
depresión, irritabilidad, nauseas,
vómitos, etc.

50. CLINICA hombre
Fase Encefálica 3 a 5 días.
→
Nerviosismo, irritabilidad,
hipersensibilidad, actitud de terror,
dificultad para respirar, fiebre,
contracciones de diafragma y laringe.
El hombre se vuelve hidrofóbico.
Acumulación en la boca y garganta
de secreción espesa de moco.

51. CLINICA hombre
Parálisis, coma y muerte.
Rabia paralítica 20% de los
→
pacientes. Fenómenos paralíticos,
parálisis flácida de los esfínteres,
parálisis respiratoria o bulbar y
muerte.
Encefalitis, mielitis.

52. VIRUS DE LA RABIA
Patología

53. VIRUS DE LA RABIA
Patología

54. VIRUS DE LA RABIA
Patología
En el perro:
Rabia Furiosa
Rabia Paralítica o
Muda
Manifestaciones Clínicas

55. CLINICA animales
RABIA FURIOSA
Violenta agitación.
Perversión del gusto.
Salivación abundante.
Hidrofobia ausente.
Animal muerde todo.
Apresa todo lo que
encuentra.
RABIA PARALITICA
Menos frecuente.
Estado paralítico al
inicio de la
enfermedad.
Muerte después de
4 ó 5 días después
de primeros
síntomas.

56. CLINICA animales
RABIA EN PERRO.
Incubación: 15 a 90 días. Raro hasta
7-8 meses.
Saliva infectante a final de incubación y
antes de primeros síntomas.
Cambio de carácter.
Fase furiosa o paralítica.

58. VIRUS DE LA RABIA
Patología

59. RABIA EN GATO.
Siempre manifiesta rabia furiosa.
Mordidas múltiples y penetrantes.
También transmitida por arañazos.
CLINICA animales

60. RABIA EN HERBIVOROS.
Siempre padecen rabia paralítica.
RABIA EN ANIMAL SILVESTRE.
Siempre padecen rabia furiosa.
Mordeduras peligrosas cabeza y
→
cuello.
CLINICA animales

61. CLINICA
RABIA EN MURCIELAGOS.
Perpetúan la enfermedad.
La transmiten a otras especies.
Pueden o no presentar síntomas de
enfermedad, algunos al sobreponerse
constituyen portadores durante mucho
tiempo.
animales

62. Clínica
Tinción con Técnica de séller
Diagnóstico para el Descubrimiento del Antígeno
Aislamiento del virus en un cultivo celular
Identificación del virus utilizando anticuerpos monoclonales
Diagnóstico Intra Vitam
Determinación de Antígenos de la Rabia
 ELISA
Prueba de anticuerpo Prueba de anticuerpo
fluorescente (FA)fluorescente (FA)
Prueba de la Prueba de la
referenciareferencia

63. LABORATORIO
DIAGNÓSTICO DE LA RABIA
ULTRAESTRUCTURA
SEROLOGÍA
METODOS DE AMPLIFICACIÓN
ANATOMÍA PATOLÓGICA
CARACTERÍSTICA
PRUEBA DIRECTA DE
ANTICUERPOS
FLUORESCENTES (dFA)CLÍNICO
INOCULACIÓN EN RATONES
EPIDEMIOLÓGICO
*HUMANO
*ANIMAL

64. OBSERVACIÓN DEL ANIMAL
•SOSPECHOSO SACRIFICADO
•OTROS OBSERVACIÓN NORMAL
CONDUCTA
EXTRAÑA
AGRESIVIDAD
SALIVACIÓN
EXCESIVA
SACRIFICIO

65. MUESTRAS PARA EL
ESTUDIO
DEPENDIENDO DEL TIPO DE ESTUDIO:
•SALIVA
•IMPRESIONES CORNEALES
•TEJIDO CUTÁNEO
•LCR
•TEJIDO CEREBRAL
•SUERO

66. A.PRUEBA DIRECTA DE
ANTICUERPOS FLUORESCENTES
•DEMOSTRADA POR GOLDWASSER Y
KISSLING EN 1985.
•PARA 1969 FUE ADOPTADA POR LOS
LABORATORIOS DE SALUD PÚBLICA.
•TEJIDOS IDEALES:
•IMPRESIONES CORNEALES
•BIOPSIAS CUTANEAS
•SEDIMENTOS EN SALIVA Y
LCR
•BIOPSIA DE CORTEZA,
CEREBELO O GLÁNDULA
SALIVAL

67. VIRUS DE LA RABIA
Diagnóstico
Prueba Directa de Anticuerpos Fluorescentes

68. VIRUS DE LA RABIA
Diagnóstico

69. USANDO DE SUERO
ANTIRRÁBICO DE CRICETO
A.PRUEBA DIRECTA DE
ANTICUERPOS FLUORESCENTES

70. A.PRUEBA DIRECTA DE
ANTICUERPOS FLUORESCENTES

71. A.PRUEBA DIRECTA DE
ANTICUERPOS FLUORESCENTES

72. A.PRUEBA DIRECTA DE
ANTICUERPOS FLUORESCENTES

73. VIRUS DE LA RABIA
Diagnóstico

74. Tejido Nervioso Sano
Cuerpos de Negri en tejido Nervioso
VIRUS DE LA RABIA
Diagnóstico

75. CUERPOS DE NEGRI (1903)
NEURONA INFECTADANEURONA SANA

76. B. ANATOMÍA PATOLÓGICA
CUERPOS DE NEGRI
INFILTRADOS DE CÉLULAS INFLAMATORIAS
PERIVASCULARES.
NÓDULOS CONSTITUIDOS
POR CÉLULAS GLIALES

77. CUERPOS DE NEGRI (1903)

78. CUERPOS DE NEGRI (1903)
ESTOS ERAN CUERPOS DE INCLUSIÓN
REDONDOS VARIABLES DE TAMAÑO DE
25 A 27 µm.
CÉLULAS DE PURKINJE DEL CEREBELO
Y EN LAS CÉLULAS DE LA MÉDULA Y
VARIOS GANGLIOS.
GLÁNDULAS
SALIVALES
LENGUA
OTROS.

79. INMUNOHISTOQUÍMICA
(IHC)
USO DE SISTEMAS ENZIMÁTICOS
ENZIMA + ANTICUERPO
ANTICUERPO + ANTÍGENO
ENZIMA ACTIVADA

80. C. INOCULACION EN
ANIMALES

81. PARÁLISIS FLÁCCIDA EN
LAS PATAS
ENCEFALITIS
MUERTE
DETERMINACIÓN DE
CUERPOS DE NEGRI
C. INOCULACION EN
ANIMALES
PRUEBA DE
ANTICUERPOS
FLUORESCENTES

82. CÉLULAS DEL RIÑÓN DE HAMSTERS
BEBÉS (BHK)
DETECCIÓN DE ANTÍGENOS
D. METODOS DE AMPLIFICACIÓN
•CULTIVO
NO ES DE RUTINA.
 TIEMPO
SENSIBILIDAD
NEUROBLASTOMA DE RATÓN
(MNA) TIPO 2 A

83. REACCIÓN EN CADENA DE LA POLIMERASA
EXTRACCIÓN DEL GENOMA
ARN
AMPLIFICADO 30 VECES
ADN
POLIMERASA
TRANSCRIPTASA
REVERSA
D. METODOS DE AMPLIFICACIÓN

84. E. ULTRAESTRUCTURA
A. SILUETA EN FORMA DE BALA.
B. ESTRIACIONES DE LA RIBO NÚCLEO PROTEÍNA
COMO EL CUERPO DE UNA ABEJA.
C. ESPIGAS DE GLUCOPROTEÍNA.

85. F. SEROLOGÍA
ANTICUERPOS
NEUTRALIZANTES
ANTICUERPOS
FIJADORES DE
COMPLEMENTO

86. VIRUS DE LA RABIA
Diagnóstico
Cuerpos de Negrí en Animales

87. AVANCES EN EL DIAGNÓSTICO
DE LA RABIA EN VENEZUELA
•LA IDENTIFICACIÓN DE DOS VARIANTES ANTIGÉNICAS
DIFERENTES
PERROS (VARIANTE 1)
MURCIÉLAGOS VAMPIROS
(VARIANTE 3).

88. VIRUS DE LA RABIA
Tratamiento, Prevención y Control

89. TRATAMIENTO.

90. EXISTE

91. TRATAMIENTO.
Inespecífico:
Limpieza.
Reparación de las
heridas.
Aplicación de
antibióticos.
Profilaxis antitetánica.
Específico:
Seroterapia
antirrábica.
Vacunación
antirrábica (amplia
variedad).

92. SEROTERAPIA.
Inmunización Pasiva.

93. Suero hiperinmune
antirrábico:
Inmunoglobulina antirrábica
humana
VIRUS DE LA RABIA
Tratamiento, Prevención y Control
Inmunización Pasiva

94. Gammaglobulina Humana
Antirrábica.
Obtenida a partir del plasma de
donadores hiperinmunizados.
Dosis recomendada: 20 UI/kg (la mitad
infiltrada en la herida y el resto por vía
intramuscular).
Proporcionan protección inmediata (por 21
días).
No tiene efectos alérgicos.

95. Suero Hiperinmune Antirrábico.
Se utiliza cuando no está
disponible la anterior.
Se obtiene de caballos
hiperinmunizados.
Dosis recomendada: 40
UI/kg (mitad en la herida,
el resto vía IM).
Puede asociarse con
choque anafiláctico y a
enfermedad del suero.

96. VACUNAS.
Inmunización Activa.

97. Vacuna de Tejido
Nervioso
VIRUS DE LA RABIA
Tratamiento, Prevención y Control
Inmunización Activa

98. Vacunas de Células
Diploides Humanas (VDCH).
Adaptación del virus para crecer en líneas
de células fibrobásticas de pulmón de
embriones humanos, con el fin de obtener
una suspensión del virus libre de SNC y
proteínas extrañas.
Estable a 37°C durante un mes y 3 años y
medio a 2-8°C.
Hay 2 tipos: WI-38 y la MRC-5.

99. Vacuna Absorbida contra
la Rabia (VAR).
Hecha de una línea
celular diploide
derivada de células
pulmonares de mono
Rhesus fetal.
Igual de eficaz y
segura que la
anterior.

100. Vacuna de Tejido Nervioso.
Elaborada a partir de
cerebro de carnero, cabra
o ratón infectados.
Las 2 primeras tienen
buen poder inmunológico,
son baratas y fáciles de
preparar. Complicaciones
en altas cantidades.
La última (ratones
lactantes), muy
inmunógena, se da en 3
dosis separadas.
Trabajada en Vzla
(Caracas).

101. Vacuna elaborada con técnicas de biología
molecular
Vacuna de embrión de pato
VIRUS DE LA RABIA
Tratamiento, Prevención y Control

102. Vacunas elaboradas con
Técnicas de Biología Molecular.
Se inserta en el virus el
genoma que codifica para
la proteína G (sugiere
una buena respuesta
inmune).
La ingeniería genética
logró inducir la
producción de
glicoproteínas de
Rhabdovirus en E. coli.

103. Vacunas Avianizadas.
Actualmente la más utilizada es la de
embrión de pato (se eliminan las cabezas
antes de la preparación, con el fin de
quitar tejido nervioso y evitar la encefalitis
alérgica).
Menos inmunógena que la anterior,
ocasionando reacciones variadas (locales
y/o generales).

104. Seleccione las mascotas domésticas con mucho cuidado
Vacune a sus mascotas contra la rabia y manténgase al día
con todas las vacunas
No trate de separar a los animales que estén peleando
Evite los animales desconocidos o enfermos
No se acerque ni juegue con animales salvajes de ningún
tipo

105. Medidas de Prevención
• Urbana
- Control de Perros Callejeros
- Vacunación de Mascotas
- Vacunación de Personas en Alto Riesgo
• Rurales
- Control de Población de Murciélagos
- Vacunación de ganados
- Higiene Ambiental Basura
Pre-exposición

106. Profilaxis Pre - exposición
Personal
de Riesgo
Profilaxis Pre-exposición
• Personal Médico en contacto
• Veterinarios
• Cuidadores de Animales
• Espeleólogos
• Guardabosques
• Laboratoristas de Unidades Sanitarias

107. Profilaxis Pre-exposición
• Vacuna
Dosis:
0,1 ml. (SC)
1.0 ml. (IM)
Período: 21 d. ó 28 d.
IM ó SC = 0,7,21 ó
28.
Refuerzos (1 dosis)
IM= 1,0 ml.
SC= 0,1 ml.
Células Diploides Humanas (VHCD)
Régimen de Vacunación
• Chequeo de Anticuerpos
Títulos Aceptable = 1:5

108. Profilaxis Pre-exposición
Régimen de Vacunación
Tejido Nervioso de Equinos
• Vacuna
Dosis 2ml (SC)
Período: 7 d
consecutivos
Refuerzos (1 Dosis)
• Chequeo de Anticuerpos
Títulos Aceptable = 1:5

2 ml (SC)

109. Manejo de Casos Post-exposición

• Historia del Paciente
• Vacunación e Inmunización Pasiva
• Manejo de Herida

110. Manejo de Casos Post-exposición
Ingreso del Paciente
• Datos de Animal Agresor
• Situación del Animal
• Datos de Persona Mordida

111. DATOS DE FILIACIÓN DEL ENFERMO
Identificación (apellidos y
nombre):__________________________________________________________
Fecha de nacimiento ___ /___ /__ Edad: (Años):___ Sexo: Hombre Mujer
día mes año
Domicilio
_______________________________________________________________________________
Localidad _______________________________ Provincia ____________________
Tfno._____________
Ocupación ________________
DATOS CLÍNICOS
Fecha de inicio de los primeros síntomas ____ / ____ / ____
Sintomatología:
__________________________________________________________________________
Complicaciones (Citar):
___________________________________________________________________
Ingreso en hospital No Sí Fecha de hospitalización:____ / ____ / ____
Centro _______________________________________ Servicio
_________________________________________
Tratamiento:
Local:______________________________________________________________________________
_________
Vacuna: No Sí : Tipo:__________ Lab:_______ Lote:______ Fecha inicio vacunación:__/__/__
Pauta:____; Vía:_____ Región:______________ Nº Dosis: ___
Control serológico postvacunación: No Sí : Fecha:__/__/__ Título:___
Inmunoglobulina: No Sí Fecha: __/__/__ Dosis: _______ Zona:_________
Otros
tratamientos:______________________________________________________________________
Evolución: Curación Fallecimiento : Fecha:___/___/___
DATOS DE LABORATORIO: 2
Fecha:__/__/__ Tipo y resultado:_________________________________
DATOS EPIDEMIOLÓGICOS
Caso: Sospechoso/probable Confirmado
DATOS DE LA AGRESIÓN:
Fecha: __/__/__ Lugar: _______________________________________ Provocación previa: NO SI
TIPO AGRESIÓN:
CONTACTO
Tipo de lesión: Leve Moderada Grave Múltiple
DATOS DEL ANIMAL AGRESOR:
Especie: Perro Gato Otros domésticos : Citar:________________
Salvaje : Citar:_________________________
Murciélago : Especie:_____________________
Si se trata de perro o gatos: Vacunado: NO SI : Fecha:__/__/__ Tipo vacuna: ___________
Observación: NO SI : Fechas:__/__/__ al __/__/__
Sacrificio animal: NO SI : Fecha:__/__/__
Diagnóstico de laboratorio: NO SI : Fecha:__/__/__ ; Tipo y resultado:_________________
DATOS DEL DECLARANTE
Fecha declaración del caso _____ / ____ / ____
Médico que declara el caso
__________________________________________________________________
Centro de Trabajo ____________________________________________ Tfno
_______________________
Municipio _________________________________________
VIRUS DE LA RABIA

112. Manejo de Casos Post-exposición
1.- Limpieza
Sangrado
Agua y Jabón
Amonio Cuaternario
Cloruro de Benzalconio 1-4%
Bromuro de Centrimonio 1%
2.- SuturaPuntos de afrontamiento
Manejo de Herida

113. 4.- Tratamiento de Antibióticos (según gravedad)
3.- Vacunación contra el Tétano
NiñosTriple (3 dosis + refuerzo)
AdultosToxoide Tetánico
Manejo de Casos Post-exposición
Manejo de Herida

114. • Epidemiología de la Zona
• Características del Ataque
• Estado del Animal
Procedencia
Vacunación
• Localización de la mordida
Vacuna
e
Inmunizació
n
Manejo de Casos Post-exposición

115. Régimen de Vacunación
Tejido Nervioso de Equinos
• Vacuna • Suero
Dosis 2ml (SC)
Período: 7 d consecutivos
Refuerzos
10 d. de última dosis
30 d. 1º refuerzo
60 d. 1º refuerzo
90 d. 1º refuerzo
Dosis:
<25 Kg. 1.000 UI
>25 Kg. 40 UI x Kg
Dosis Máxima: 3.000 UI
Plan de Aplicación
50% IM
50% periferia H.
Vacuna
e
Inmunizació
n
Manejo de Casos Post-exposición

116. Régimen de Vacunación (OMS)
Células Diploides Humanas (VHCD)
• Vacuna • Suero
Dosis:
0,1 ml. (SC)
1.0 ml. (IM)
Período: 28 d.
IM= 0,3,7,14,28.
SC= 0*8,7*4,28*1,91*1.
Refuerzos (1 dosis)
IM= 1,0 ml.
SC= 0,1 ml.
Dosis: 20 UI * Kg
Plan de Aplicación
50% IM
50% periferia H.
Vacuna
e
Inmunizació
n
Manejo de Casos Post-exposición

117. VIRUS DE LA RABIA
Vacunar inmediatamenteRabioso o sospechoso de
rabia
No comenzar profilaxis a
menos que el animal
presente síntomas de rabia
Sano y disponible para
observación durante 10d
Perros y gatos
Consultar con autoridades
sanitarias; las mordeduras de
ardillas, hámsters, cobayas,
jerbos, ratas, ratones,
conejos y liebres casi nunca
requieren tratamiento
antirrábico
Considerar individualmenteGanado Roedores y
lagomorfos (conejos y
liebres)
Vacunar inmediatamenteConsiderar como rabioso, a
menos que no exista rabia
en la zona o se demuestre
que el animal estaba sano
mediante pruebas de
laboratorio
Mofetas, mapaches,
murciélagos, zorros y la
mayoría de los demás
carnívoros; marmotas
Consultar con autoridades
sanitarias
Desconocido (escapado)
RECOMENDACIONES PARA
LA PROFILAXIS DESPÚES
DE LA EXPOSICIÓN
VALORACIÓN
Y
DISPOSICIÓN DEL ANIMAL
TIPO DE ANIMAL
Profilaxis de la Rabia después de la exposición

118. Se suspende vacunaSano
Se inicia suero o
gammaglobulina y
vacuna

Con o
probable rabia
Lamedura de las mucosas,
mordedura grave (múltiples o
situadas en cara, cabeza,
cuello o dedos)
Se continúa la
vacunación y se inicia
suero o
gammaglobulina
Rabioso
Se inicia Tx y se
suspende si el animal
está sano
Sano
Probablemente
rabioso
Lamedura de piel, arañazo,
mordedura leve en partes
cubiertas (tronco o
extremidades)

Ninguno
Sin contacto

Ninguno Sano Contacto sin lesión
TRATAMIENTO 10 DÍAS*
Al momento
de la
exposición
NATURALEZA DEL
CONTACTO
INMUNOPROFILAXIS

119. Control Sanitario Control Sanitario
Control Inmunológico Control Inmunológico
Control QuimioterapéuticoControl Quimioterapéutico
¿ESTREGNINA?

120. Eliminación de perros
Tratamiento de focos

122. SITUACIÓN DE LA RABIA A
NIVEL MUNDIAL.
(Evoluciona constantemente,
difiere de un continente a otro).

123. AMÉRICA DEL NORTE.
Aproximadamente 7.877 casos no
humanos declarados rabiosos con una
mayoría de animales salvajes (92%).
El murciélago representa un vector
importante (causante de 3 a 5 casos
humanos registrados todos los años).

124. EUROPA.
Exhaustivo programa de vacunación canina
(domésticos) y/o eliminación (callejeros),
prácticamente han logrado la erradicación
(Europa del Oeste).
Aplicación de vacunas antirrábicas contenidas
en los , para disminuir virus rábico en zorros (2°
Guerra Mundial).
Menos de 10 casos de rabia humana por año.

125. ASIA.
Rabia humana muy poco identificada
(40.000 muertes aprox.).
Establecimiento de programas en
contra de la enfermedad: China,
Indonesia, Malasia, Tailandia.
El perro continua siendo el principal
vector.

126. AFRICA.
La rabia humana cobra de 100 a 200
muertes por año, únicamente con
diagnóstico clínico.
El principal vector es el perro (90%), 4.000
casos diagnosticados por la OMS.

127. AMÉRICA LATINA.
Establecimiento de programas de
vacunación, que han permitido la
disminución de casos (aproximadamente
200 casos por año).
El principal vector es el perro, seguido por
el murciélago (hematófago).

128. SITUACIÓN DE LA RABIA EN
VENEZUELA.

129. RABIA HUMANA
Predominio en los estados Táchira y Zulia.
Ningún tipo de registro en los estados
Monagas, Sucre, Nueva Esparta, Delta
Amacuro.

130. RABIA ANIMAL
Registrada a nivel nacional.
Predominio en los estados Zulia,
Carabobo, Aragua y Táchira.

131. Estados con Rabia Animal
1999
1
2 3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
Zulia 1
Táchira 2
Barinas 3
Apure 4
Cojedes 5
Lara 6
Falcón 7
Aragua 8
Guárico 9
Anzoátegui10
Monagas 11
Bolívar 12
Estados
Afectados

133. SITUACIÓN DE LA RABIA EN
EL ZULIA.

134. Rabia Humana. Frecuencia de Casos por Municipio. Región Zuliana.
Años 1995 - 2000
Fuente de Información: Coordinación Regional de Zoonosis.
Dirección Regional de Epidemiología. Laboratorio de Salud Pública.
Diagnóstico de Rabia. Estado Zulia
Municipios 199519961997199819992000TOTAL
CASOS
MARACAIBO
SAN FRANCISCO
LAGUNILLAS
MARA
CABIMAS
PAEZ
J.E. LOSSADA
SIMON BOLIVAR
INSULAR PADILLA
MIRANDA
V. RODRIGUEZ
URDANETA
BARALT
SANTA RITA
TOTAL
84
-
-
57
-
4
24
-
1
2
-
-
-
-
172
65
33
-
15
2
1
8
-
-
2
-
3
-
-
129
40
20
-
15
1
8
2
-
1
1
-
-
-
-
88
15
1
13
19
3
3
-
11
3
-
-
-
-
-
68
8
1
45
5
36
2
1
-
1
-
3
-
2
1
105
29
5
2
4
7
2
3
-
2
1
-
-
-
-
55
241
60
60
115
49
20
33
11
8
6
3
3
2
1
617

135. RABIA URBANA: OCURRENCIA DE CASOS HUMANOS POR MUNICIPIOS
REGIÓN ZULIANA. AÑOS 1996-2003*
14
21-12-44TOTAL
1
------1-PAEZ
-
--------MARA
1
----1---LAGUNILLAS
1
----**1---CABIMAS
5
2-----21SAN FRANCISCO
6
1-1--13MARACAIBO
TOTAL2003*2002200120001999199819971996MUNICIPIOS
*FUENTE: Coordinación Regional de Zoonosis
Dirección Regional de Epidemiología
Sistema Regional de Salud
* HASTA SEMANA EPIDEMIOLOGICA Nº 35
**PACIENTE FALLECIDO EN EL ESTADO LARA .

136. 64572918051936578115TOTAL
770000000MACHIQUES DE PERIJA
630000003
LA CAÑADA DE
URDANETA
400010012MIRANDA
14000031100SIMON BOLIVAR
100001000SANTA RITA
1520022261PAEZ
8327283417148MARA
540002391300LAGUNILLAS
2713931028JESUS E. LOSSADA
53700734311CABIMAS
810021310ALMIRANTE PADILLA
129274035111735SAN FRANCISCO
244224140267153657MARACAIBO
TOTAL
*2003*2002200120001999199819971996MUNICIPIOS
*FUENTE: Coordinación Regional de Zoonosis
Dirección Regional de Epidemiología
Sistema Regional de Salud
RABIA URBANA: OCURRENCIA DE CASOS CANINOS POR MUNICIPIOS
REGIÓN ZULIANA. AÑOS 1996-2003*
* HASTA SEMANA EPIDEMIOLOGICA Nº 35

137. Encéfalos ingresados por
especies (2000 – 2001).
_010351Positivos
12045557Ingresos
OtrosHumanoFelinosCaninos

138. Todos los casos son 100% mortales
La ocurrencia de rabia canina es de gran riesgo