Análisis hidrobiológicos de Certimin.pptx

Análisis hidrobiológicos de Certimin

1. Análisis hidrobiológicos Omar Sandoval A. Yajaira Vilchez V. Lab . Ambiental Sala de Hidrobiología

2. Fitoplancton. Conjunto de los organismos acuáticos autótrofos del plancton, que tienen capacidad fotosintética y viven suspendidos en la columna de agua, de escasa o nula movilidad siendo llevado por las corriente. El fitoplancton se encuentra en la base de la cadena alimentaria de los ecosistemas acuáticos, ya que sirve de alimento a organismos mayores; es decir realiza la parte principal de la producción primaria en los ambientes acuáticos, sobre todos los animales marinos. Se les puede encontrar como celulas solitarias, en pares, trios , etc., formando cadenas, filamentos o colonias. Actualmente, estos organismos se encuentran clasificados como bacterias - las algas verdeazuladas - o como protistas. Conceptos.

3. Zooplancton. Se denomina zooplancton o plancton animal, a la fracción del plancton constituida por seres que se alimentan, por ingestión, de materia orgánica ya elaborada Pueden ser organismos microscopicos y macroscopicos , depredadores, con una alta capacidad de movilizarse en toda la columna de agua. Compuesta por una gran diversidad de taxa (celenterados, artropodos , moluscos, vertebrados), ya sea en una fase larval o todo el ciclo de vida.

4. Macroinvertebrados bentonicos ( macrobentos , bentos). Se denomina bentos a la comunidad formada por los organismos que habitan el fondo de los ecosistemas acuáticos. El adjetivo que se hace derivar de « bentos » es « bentónico ». Todos los organismos que tienen un tamaño mayor a las 500 micras. Los macroinvertebrados son los organismos que han sido utilizados con mayor frecuencia en los estudios relacionados con la contaminación de los ecosistemas acuáticos. Compuesta por una gran diversidad de taxa ( Nematoda , Nemertea , Annelida , Molusca, Artropoda , etc ).

5. Perifiton . Se lo define como el conjunto de organismos microscópicos (bacterias, hongos, algas y protozoos), con neta predominancia algal , que crece sobre diferentes sustratos.

6. Taxonomía En su sentido más general se emplea el término como la ciencia de ordenar la diversidad biológica en taxones anidados unos dentro de otros, ordenados de forma jerárquica, formando un sistema de clasificación.

7. Métodos de monitoreo hidrobiológicos

8. Tipos de muestreos. Fitoplancton Cuantitativo – Cualitativo Zooplancton Cuantitativo – Cualitativo Macroinvertebrados Bentonicos * Perifiton ** Macrofitas Necton * Muestreo cuantitativo ** Muestreo cuantitativo y cualitativo

9. Tipos de ambientes. Ambiente marino. Salinidad 30 – 35 %

10. Ambiente epicontinental . Todos los cuerpos de agua sobre el continente. Sistemas lenticos Sistemas loticos

11. Ambiente estuarino . Zona comprendida en la desembocadura de los ríos en el mar, con características físico químicas y biológicas propias.

12. Métodos de muestreo. FITOPLANCTON Materiales Ropa adecuada GPS Botella Niskin Red de fitoplancton de 20 micras. Baldes Frascos Mangera * Reactivos Lugol Formol 20% *Método alternativo

13. Método con la Botella Niskin Se toman muestras a tres niveles de profundidad (superficial, media profundidad y de fondo). Su correcto armado necesita de: Un cabo o soga, Un par de mensajeros, Un lastre o plomo (a una distancia de 1m de la botella). Fitoplancton Cuantitativo – Ambiente marino.

14. 1 ro . S e arma correctamente. 2 do . Se desciende a la profundidad indicada, se espera un par de minutos. 3 ro . Se activa el sistema de cierre, y se empieza a izar la botella . 4 to . Se deposita en un frasco rotulado y preservados con lugol .

15. Método de la manguera Manguera de PVC compuesta por tres tramos acoplados (y desmontables) de 5 m cada uno, con llaves de paso que permiten obtener una muestra integrada (0-15m) o tres muestras integradas (0-5, 5-10, 10-15m ).

16. La muestra es preservada con Lugol , agregándole unas gotas hasta que la muestre se torne color Coñac. El contenido de cada sección de la manguera es depositado en un recipiente adecuado y la muestra es colectada en un frasco de 250ml.

17. Características de la red : El material es de Nytal . El tamaño de poro es de 20 µm. El largo de la red es 3 veces el diámetro de su boca. Arrastre horizontal : Correcto armado de la red. Se le debe dar una distancia de 20 metros de la embarcación. Se debe arrastrar a la mínima velocidad por unos 5 minutos. Fitoplancton Cualitativo – Ambiente marino.

18. Arrastre vertical : Descender la red en forma vertical y dejarla a unos 50 cm del fondo. Ir recogiendo la red a una velocidad de 1m/s. Repetir esta maniobra tres veces. En la orilla : Recoger con un balde (preferentemente de 20 Litros) el agua de mar. Echarle dentro de la red. Echarle como mínimo 5 baldes de 20 L (100 Litros)

19. 1 ro . Recoger la red con cuidado. 2 do . Lavar para que todo el fitoplancton caiga en el frasco colector. 3 ro . Verter la muestra a su frasco con cuidado. 4 to . Preservarlo con formal al 20% (20ml para un frasco de 250ml)

20. Busca la mejor ubicación para realizar el muestreo. En una laguna, buscar el lado mas fácil para poder ingresar. En un rio, encontrar un recodo donde el agua este calma. Realizar un colecta directa con un frasco de 500 ml a unos 5cm de profundidad. Fijar con lugol y rotular. Fitoplancton cuantitativo – ambiente epicontinental

21. En lagos, lagunas: Recoger con un balde 100 litros (5 veces un balde de 20 litros). En ríos: Colocar la red a contra corriente por 5 minutos. La muestra colectada debe ser preservada con formol al 20% (20ml para un frasco de 250 ml), y rotulada. Fitoplancton cualitativo – ambiente epicontinental

22. Métodos de muestreo. ZOOPLANCTON Materiales Ropa adecuada GPS Baldes Frascos Red de zooplancton de 150 µm y 75 µm Reactivos: Formol 20% Alcohol 70%

23. ZOOPLANTON CUANTITATIVO - AMBIENTE MARINO Se utiliza una red de zooplancton de 150µm de abertura de poro. Un equipo para medir el volumen de agua que ingresa a la red ( flujometro ). Se arma correctamente la red. Se le baja cuidadosamente en el mar dándole una distancia mínima de 20m. Se arrastra a baja velocidad, por 5 minutos.

24. Se retira con cuidado el copo, y su contenido se deposita en su totalidad en su respectivo frasco. Se le agrega formol al 20% (20ml para un frasco de 250ml). El frasco debe de estar debidamente rotulado.

25. ZOOPLANTON CUALITATIVO - AMBIENTE MARINO Realizar la misma metodología que el cuantitativo, pero dándole mas tiempo al arrastre y sin el flujometro . La muestra colectada debe ser preservada con formol al 20% (20ml para un frasco de 250 ml), y rotulada. ?

26. Se utiliza una red de 75 µm de poro. Con ayuda de un balde, echar unos 100 L dentro de la red (5 baldes de 20L). Lo contenido en el frasco colector, depositarlo en el frasco previamente rotulado para preservar. ZOOPLANTON CUANTITATIVO – AMBIENTE EPICONTINENTAL

27. ZOOPLANTON CUALITATIVO – AMBIENTE EPICONTINENTAL Echar dentro de la red un numero considerable de baldazos . Elegir una zona de remanso en sistemas loticos. La muestra colectada debe ser preservada con formol al 20% (20ml para un frasco de 250 ml), y rotulada. ?

28. Métodos de muestreo. MACROINVERTEBRADOS BENTONICOS Materiales: GPS Frascos boca ancha. Red Surber de 500 µm Draga Tubo Penchaszadeh (18.5cm de diametro , 35cm de altura) Muestreador de Hess Bolsas tamiz de 500 µm Marco biologico Bandeja grande Reactivos: Formol 20% Alcohol 96%

29. MACROINVERTEBRADOS BENTONICOS - AMBIENTE MARINO DE FONDO BLANDO Muestreo Infralitoral Es necesaria una embarcación. Se utiliza la draga tipo Van Veen . Se arma correctamente la red asegurándose que este bien amarrada. Se le baja cuidadosamente en el mar soltándola a una corta distancia del fondo para que sea mas efectiva.

30. La draga y su contenido es recogida con cuidado. El contenido es depositado en una bandeja adecuada. El sedimento es vaciado en la bolsa tamiz y es tamizada en el mar.

31. Con cuidado se introduce el contenido de la bolsa tamiz al frasco de 250ml. El frasco debe de estar correctamente rotulado. La cantidad de preservante será de 20ml para un volumen de 250ml.

32. Muestreo Intermareal (playa arenosa, areno fangosa, etc ). Se utiliza el Tubo Penchaszadeh . Se introduce el muestreador en el sedimento y se levanta con cierta inclinacion . El material contenido se deposita en la bolas tamiz, y se tamiza en el mar. El tamizado se guarda en un frasco. Rotulado y fijado.

33. Se utiliza el Marco Biologico de diferente medida( 50 x 50 cm; 1 x 1m). Se colecta todos los organismos que se encuentren dentro del marco. Utilizar guantes, espatulas , etc. Guardarlas en envases adecuados, preservarlo y rotularlo. MACROINVERTEBRADOS BENTONICOS - AMBIENTE MARINO DE FONDO DURO

34. En sistemas Loticos. Es necesaria una red surber . Se coloca a contracoriente y todo el sedimento que se encuentra dentro del area demarcada es resuspendido para que ingrese a la red. MACROINVERTEBRADOS BENTONICOS – AMBIENTE EPICONTINENTAL

35. Sacudir la red, tratando de que todos los organismos se concentren en el fondo. Con cuidado, llevar los organismos al frasco debidamente rotulado, para ser preservados.

36. En sistemas Lenticos. Es necesaria un muestreador de Hess . Se introduce en el sedimento, y con ayuda de las manos se remueve el fondo. El sedimento suspendido se hace ingresar a la malla, para luego tamizada. Los organismos al final son colectados, introducidos a su frasco rotulado y preservado.

37. Métodos de muestreo. PERIFITON Materiales: GPS Frascos boca ancha. Marco biologico 10 cm x 10 xm Bandeja grande Pizeta Reactivos: Formol 20% Alcohol 96%

38. Seleccionar una roca de base plana. Colocarla dentro de una bandeja blanca. Realizar el muestreo sobre el lado de la roca que le da el sol. Demarcar sobre la roca un área de 10cm x 10cm.

39. Hacer un raspado del todo el área, y con ayuda de una pizeta con agua destilada, escurrir el raspado a la bandeja. Verter el contenido de la bandeja a un frasco debidamente rotulado, y preservarlo con formol.

40. Metodología de análisis hidrobiológicos

41. Fitoplancton Equipos: Microscopio invertido. Materiales: Camaras de Utermohl Reticula de Whipple Pipetas. Contometros . Placas petri Reactivos: Lugol .

42. Análisis cuantitativo de fitoplancton MUESTRA SEDIMENTACION EN CAMARA UTERMOHL HOMOGENIZAR 24 HORAS MINIMO DE SEDIMENTACION LECTURA EN EL MICROSCOIPO INVERTIDO REPORTE DE RESULTADOS CONTEO Reporta en la hoja de datos preliminares Reporta en la hoja de resultados

43. Análisis cualitativo de fitoplancton MUESTRA USO DE LA CAMARA SEDWING-RAFTER HOMOGENIZAR LECTURA EN EL MICROSCOIPO INVERTIDO REPORTE DE RESULTADOS REGISTRA LA PRESENCIA Reporta en la hoja de datos preliminares Reporta en la hoja de resultados

44. Zooplancton Equipos: Estereomicroscopio Materiales: Placa de conteo tipo Bogorov . Micropipeta . Tamiz para filtracion inversa. Contometros . Placas petri Reactivos: Alcohol 70% Rosa de bengala

45. Análisis cuantitativo de zooplancton MUESTRA FILTRACION INVERSA REPORTE DE RESULTADO AJUSTAR VOLUMEN En cono imhoff LECTURA EN EL ESTEREO MICROSCOPIO USO DE LA PLACA BOGOROV CONTEO Reporta en la hoja de datos preliminares Reporta en la hoja de resultados

46. Análisis cualitativo de zooplancton MUESTRA FILTRACION INVERSA REPORTE DE RESULTADO AJUSTAR VOLUMEN LECTURA EN EL ESTEREO MICROSCOPIO USO DE LA PLACA BOGOROV REGISTRO DE PRESENCIA Reporta en la hoja de datos preliminares Reporta en la hoja de resultados

47. Macroinvertebrados Bentonicos Equipos: Estereomicroscopio Microscopio compuesto Materiales: Bandeja blanca. Tamiz de 500 micras. Placas septadas . Contometros . Placas petri . Reactivos: Alcohol 70% Azul de metileno.

48. MUESTRA TAMIZADO ( 500 µm) LECTURA EN EL ESTEREO MICROSCOPIO CONTEO Y BIOMASA REPORTE DE RESULTADO Reporta en la hoja de datos preliminares Reporta en la hoja de resultados

49. Perifiton Equipos: Microscopio compuesto Materiales: Camara Sedwing -Rafter. Contometros . Placas petri . Pipetas.

50. MUESTRA HOMOGENIZADO LECTURA EN EL MICROSCOPIO CONTEO REPORTE DE RESULTADO Reporta en la hoja de datos preliminares Reporta en la hoja de resultados USO DE LA CAMARA SEDWING-RAFTER

51. Expresión de resultados

52. Con respecto a los índices de diversidad, todos son numero positivos, que se expresan con 2 decimales. Índice de Margalef Índice de Shannon – Weaver Índice de Pielou *Índices citados en el “Protocolo para el monitoreo de efluentes y cuerpo marino receptor”- RM N° 003.202-PE Ministerio de Pesquería donde p i = n i / N

53. Con respecto al limite de detección y unidades para los análisis cuantitativos: Fitoplancton cuantitativo: 20 cel / l Zooplancton cuantitativo: 1 organismos / m 3 Macroinvertebrados bentonicos : 1 individuo / m 2 Perifiton : 1 organismos / mm 2 El conteo de las especies siempre es un numero entero. El nombre de las especies, es en cursiva. Ejm : Cryphiops caementarus y cuando se determina hasta el genero.Ejm : Tubifex sp. Consideraciones para el reporte de resultados.

54. IMPORTANCIA DE LOS ANALISIS HIDROBIOLOGICOS Estudios comprueban que los seres vivientes son buenos indicadores de alteración en el medio ambiente. Las autoridades lo están solicitando, para: Estudios de Linea Base. E.I.A semidetallado, E.I.A detallado. Programas de Monitoreo Ambiental.

55. GRACIAS