Género Strongyloides

Ciclo de vida de S. stercoralis. Todos los parásitos adultos son hembras partenogenéticas (1) que residen en las criptas del intestino delgado. Sus huevos embrionados (2) eclosionan en las criptas o en la luz intestinal. Las larvas rabditiformes L1 se anulan en las heces (3) y dan lugar a larvas filariformes infecciosas L3 (L3i) o se desarrollan a nematodos adultos vivos libres dependiendo de las condiciones ambientales. El L3i no desarrolla más si no obtiene acceso a un nuevo host. El L3i ingresa al perro por vía percutánea (4) peroralmente (5). Las larvas migran al intestino delgado y mudan primero a L4 y luego a la hembra adulta partenogénica (6). Los cachorros pueden infectarse a través de la leche si la perra tiene larvas L3 migratorias (7). La infección transplacentaria no ocurre. Este ciclo de vida parasitario de S. stercoralis se conoce como ciclo de vida homogónico. Si las condiciones ambientales son óptimas, puede tener lugar una ruta alternativa de ciclo de vida (ciclo de vida heterogónico). Las larvas rabditiformes no infecciosas se desarrollan en gusanos macho y hembras adultos libres (8) que producen huevos. Las larvas rabditiformes no infecciosas (9) que salen de los huevos se desarrollarán en L3i (10). Durante el paso a través del tracto intestinal del huésped, las larvas rabditiformes pueden experimentar muda rápidamente en L3i. Estas larvas pueden penetrar a través de la pared del intestino grueso o la piel perianal del huésped, lo que da como resultado una migración que termina en el intestino delgado (11). El proceso se llama autoinfección y se prefiere especialmente en los hospedadores neonatales o inmunocomprometidos. Se sabe que las cepas caninas de S. stercoralis infectan a los humanos (12). El ciclo de vida fue dibujado en base a la información obtenida de las siguientes referencias: [2,4,16-18].
Género Strongyloides invaginaciones inervadas de la cutícula en los nematodos. Principales órganos olfato-sensitivos de los nematodos.
aparato reproductivo mixto capaz de producir gametos masculinos y femeninos
reproducción asexual en la que el crecimiento y el desarrollo de los embriones se producen sin la fertilización . Ddesarrollo de un embrión a partir de una célula de óvulo no fertilizado
se alimentan la absorción de sustancias orgánicas por lo general derivados de la materia orgánica en descomposición
. Reproducción por un proceso sexual y asexual alternativamente

1. Género Strongyloides Julieth Alexandra Ducuara Suarez Leidy Alejandra Giraldo Martínez

2. Taxonomía Reino Animalia Phylum Nematoda Clase Secernentea Orden Rhabditida Superfamilia Rhabditoidea Familia Strongyloididae Género Strongyloides S. stercoralis www.freevectors.net S. westeri S. papillosus S. ransomi ( Bowman , 2014).

3. Morfología L1 L3 ( Bowman , 2014). (Viney, & Lok, 2015). Huevos larvados

4. Morfología Hembra de vida libre Macho de vida libre (Viney, & Lok, 2015). ( Bowman , 2014).

5. Epidemiología Ampliamente distribuido en regiones tropicales y subtropicales. Humedad Temperatura: 15 °C - 34 °C.

6. Prevalencia Autor y año Título Ubicación Metodología Resultados Chaparro-Gutiérrez, J., Ramírez-Vásquez, N., Piedrahita, D., Strauch, A., Sánchez, A., Tobón, J., & Villar-Argaiz, D. (2018) Prevalencia de parásitos gastrointestinales en equinos y factores de riesgo asociados en varias zonas de Antioquia, Colombia Antioquia 664 muestras fecales de caballos. Se realizó la prueba de McMaster modificado de tres cámaras, la prueba de Baermann y la prueba de Graham. 3,9 % Strongyloides spp . (26/664)

7. Autor y año Título Ubicación Metodología Resultados Pinilla, J., Flórez, P., Sierra, M., Morales, E., Sierra, R., Vásquez, M. C., & Ortiz, D. (2018) Prevalencia del parasitismo gastrointestinal en bovinos del departamento Cesar, Colombia Cesar 862 muestras fecales de bovinos. Técnicas coprológicas de McMaster, Dennis y Baermann. 10,8% Strongyloides spp. (93/862) Corredor, D., Anaya, A., & Medellín, M. (2018) Prevalencia y factores de riesgo asociados a la presencia de parásitos gastrointestinales en bovinos del municipio de Ventaquemada (Boyacá) Boyacá 372 muestras de materia fecal de bovinos. Técnica de formol-éter o Ritchie modificada. 1.9% Strongyloides spp. (7 /372 )

8. Autor y año Título Ubicación Técnicas Resultados Peralta, R., Mazamba, M., Reyes, P., & Zambrano, T. (2017) Strongyloides spp. en caninos de una zona rural del Guayas y el riesgo en Salud Pública Ecuador 120 muestra de heces de caninos. Técnica coproparasitaria de flotación y método de Baermann modificado. Incidencia del 8,33% de Strongyloides spp. (10/120) Giraldo, M., García, N., & Castaño, J. (2005) Prevalencia de helmintos intestinales en caninos del departamento del Quindío Quindío 324 muestras de heces caninas. Encuesta epidemiológica, método modificado de Ritchie. Strongyloides stercoralis , 4% (13/324)

9. Ciclo Biológico

10. Genética de los strongyloides

11. Lesiones Mucosa duodenal de un cachorro Yorkshire terrier de 10 semanas de edad que padecía una infección por S. stercoralis (Dillard et al., 2007) Histopatología de los pulmones de ratas en un modelo experimental de estrongiloidiasis (Tefé-Silva et al., 2012)

12. Lesiones Infiltración leucocitaria de la dermis Dermatitis Edema Urticaria Hemorragia Descamación de la superficie epitelial Congestión Enfisema Petequias Equimosis en pulmones (Barriga, 2002) Acción: Traumática, expoliatriz, mecánica, inoculadora y tóxica.

13. SIGNOS Larva currens. Prurito. Sibilancias. Dolor epigástrico Diarrea. Vómito Pérdida de peso. Erupciones cutáneas. Diarrea hemorrágica. Dolor abdominal severo. Fiebre. vetstream.com Híper infección Cuadro pulmonar. Infección de cerebro Oclusión intestinal paralítica Hemoptisis Eosinopenia Compromiso hepático drrondonpediatra.com Estrongiloidosis, diarrea negra, verminosis gastrointestinal

14. Diagnóstico Técnicas de flotación Coprocultivo www.rvc.ac.uk Técnica de Baermann Examen posmortem

15. Criptosporidiosis Coccidiosis Ascariosis porcina Diagnóstico diferencial WormBoss acopba.blogspot.com vet.uga.edu razasporcinas.com

16. Tratamiento S. stercoralis S. westeri S. papillosus S. ransomi Dietilcarbamazina, 100 mg / kg Oral Ivermectina, 0.2 mg / kg Oral Mebendazol, 20 mg / kg Oral 24 h × 3-14 d Ivermectina, 0.2 mg / kg Oral Oxibendazol, 10 mg / kg Oral Eprinomectina, 0.5 mg / kg pour on Ivermectina, 0.2 mg / kg SC Doramectina, 0.3 mg / kg IM Ivermectina, 0.3 mg / kg, SC o en alimento Levamisol, 5-8 mg / kg (después del ayuno nocturno)

17. Limpieza de las instalaciones Desinfección con agua hirviendo o con sustancias químicas (Formalina 5%) Evitar encharcamientos y aguas residuales. Control y prevención

18. Bibliografía Barriga, O. O. (2002). Las enfermedades parasitarias de los animales domésticos en la América Latina . Editorial Germinal. Bowman, D. (2014). Georgis' Parasitology for Veterinarians-E-Book . Elsevier Health Sciences. Chaparro-Gutiérrez, J., Ramírez-Vásquez, N., Piedrahita, D., Strauch, A., Sánchez, A., Tobón, J. & Villar-Argaiz, D. (2018). Prevalencia de parásitos gastrointestinales en equinos y factores de riesgo asociados en varias zonas de Antioquia, Colombia. CES Medicina Veterinaria y Zootecnia, 13 (1), 7-16. Corredor, D., Anaya, A., & Medellín, M. (2018). Prevalencia y factores de riesgo asociados a la presencia de parásitos gastrointestinales en bovinos del municipio de Ventaquemada (Boyacá). Infometric@-Serie Ingeniería, Básicas y Agrícolas, 1 (1). Dillard, K. J., Saari, S. A., & Anttila, M. (2007). Strongyloides stercoralis infection in a Finnish kennel. Acta Veterinaria Scandinavica, 49(1), 37. Giraldo, M., García, N., & Castaño, J. (2005). Prevalencia de helmintos intestinales en caninos del departamento del Quindío. Biomédica, 25 (3), 346-52. Peralta, R., Mazamba, M., Reyes, P., & Zambrano, T. (2017). Strongyloides spp. en caninos de una zona rural del Guayas y el riesgo en Salud Pública. RECIMUNDO, 1 (5), 271-287. Pinilla, J., Flórez, P., Sierra, M., Morales, E., Sierra, R., Vásquez, M. & Ortiz, D. (2018). Prevalencia del parasitismo gastrointestinal en bovinos del departamento Cesar, Colombia. Revista de Investigaciones Veterinarias del Perú, 29 (1), 278-287. Taylor, M., Coop, R., & Wall, R. (2007). Veterinary parasitology. Elsevier Health Sciences. Tefé-Silva, C., Machado, E. R., Faccioli, L. H., & Ramos, S. G. (2012). Hyperinfection syndrome in Strongyloidiasis. In Current Topics in Tropical Medicine. InTech. Viney, M., & Lok, J. (2015). The biology of Strongyloides spp. WormBook, 16 , 1-17.