Mycoplasma Pneumoniae microbiologia 1.pdf

salcedita970797 19 views 33 slides Sep 03, 2025
Slide 1
Slide 1 of 33
Slide 1
1
Slide 2
2
Slide 3
3
Slide 4
4
Slide 5
5
Slide 6
6
Slide 7
7
Slide 8
8
Slide 9
9
Slide 10
10
Slide 11
11
Slide 12
12
Slide 13
13
Slide 14
14
Slide 15
15
Slide 16
16
Slide 17
17
Slide 18
18
Slide 19
19
Slide 20
20
Slide 21
21
Slide 22
22
Slide 23
23
Slide 24
24
Slide 25
25
Slide 26
26
Slide 27
27
Slide 28
28
Slide 29
29
Slide 30
30
Slide 31
31
Slide 32
32
Slide 33
33

About This Presentation

presentación de bacterias


Slide Content

Presentado por Baltazar Alarcón PérezPresentado por Baltazar Alarcón Pérez
Neumonía atípicaNeumonía atípica

Orden de los Mycoplasmatales
4 géneros, Eperythrozoon,
Haemobartonela, Mycoplasma ,
Ureaplasma.
Enfermedades del sistema
respiratorio, traqueobronquitis y
neumonía atípica
Agrupación

Pleomórfica, (cocos, filamentos, o
una forma más distintiva de
"embudo" o "pera".
1-2 µm de largo y 0.1-0.2 µm de
ancho.
AUSENCIA DE PARED, Membrana
citopasmática de esterol.
Forma y tamaño

Afinidad tintorial
No se tiñen por Gram
(debido a la falta de pared
celular), no grampositivas ni
gramnegativas; se observan
mejor con microscopia
electrónica.

Respiración
Aerobia obligada, fermenta glucosa produciendo acido
láctico

Depende de colesterol para estabilidad de membrana (lo obtiene
del hospedero); requiere medios enriquecidos con suero o
extracto de levadura para crecer.
Debido a su pleomorfismo es complicado hacerlo crecer en
cultivo.
Respiración aeróbia estricta
Proteína P116
Requerimentos

Exclusivamente humano,
principalmente en epitelio
del tracto respiratorio; no
persiste bien en el ambiente
debido a fragilidad osmótica
Hábitat
Tipo de microorganismo
Usualmente no oportunista
salvo en hospedero
inmunocomprometido

En cultivo en agar,
presentan forma
característica de
“huevo frito”
C. colonias en cultivo

• P1 (principal adhesina): se une a
receptores de ácido siálico en células
epiteliales respiratorias.
• P30, P40, P90: proteínas accesorias
que refuerzan la adherencia.
• Efecto: colonización efectiva y
resistencia al aclaramiento mucociliar.
Adhesinas

Estructura polar especializada.
Funciona como anclaje para mantener contacto
íntimo con el epitelio.
Permite gliding motility -desplazamiento sobre células
respiratorias.
Favorece colonización persistente.
Atachment organelle

Genera peróxido de hidrógeno (H₂O₂) y ROS.
Daña membranas celulares y epitelio respiratorio.
Provoca disfunción ciliar y necrosis local.
Producción de especies reactivas de oxígeno (ROS)

• Toxina ADP-ribosilante, similar a pertussis-toxina.
• Produce vacuolización, inflamación y disfunción
inmunológica.
• Efecto clínico: daño pulmonar y síntomas
extrapulmonares.
CARDS toxin

Se transmite por gotículas respiratorias y contacto cercano; no
sobrevive bien en ambientes secos
Tiempo de incubación 2-3 semanas
Mecanismo de transmisión

Principalmente tracto respiratorio
(faringe, bronquios, pulmones),
pero también puede provocar
manifestaciones extrapulmonares
(piel, SNC, corazón, riñón)
Organos afectados

Se genera inflamación local intensa
por citoquinas, principalmente
mediada por reconocimiento vía
TLR2 y cascada NF-κB
Respuesta general del hospedero

Choque séptico
Acidosis respiratoria
Hipoxemia
Choque cardiogénico
Sordera
Convulsiones
Deshidratación
Complicaciones

Tos seca persistente, fiebre, cefalea,
malestar general, progresión lenta; en
niños, otitis, exantema; síndromes
extrapulmonares según órgano afectado
Manifestaciones clínicas generales

Mundial, sin gran estacionalidad
pero más frecuente en
verano/otoño
Distribución de la enfermedad
Frecuencia
Responsable del 11-40 % de
neumonías adquiridas en la
comunidad; especialmente
prevalente en niños >5 años
y adultos jóvenes

Humanos; sin
reservorio animal
significativo.
Reservorios
Grupos de riesgo
Niños (5-15 años), adultos jóvenes y
ancianos, inmunocomprometidos,
hacinamiento.

No tiene vectores; transmisión directa entre humanos.
Vectores
Contactos
Personas en contacto cercano, ambientes institucionales.
Pueden existir portadores asintomáticos; excreta la
bacteria incluso tras resolución de síntomas
Estado de portador

Poca respuesta a beta-
lactámicos.
Clínico

Contexto de brote en escuela o comunidad; edad típica.
Epidemiológico

Toma de muestra: Se usa exudado faríngeo, esputo;
ideal en fase inicial de síntomas; transporte a 4 °C.
Microbiológico: No se tiñe bien, cultivos lentos en
medios especiales; colonias en “huevo frito”.
La susceptibilidad es difícil de evaluar.
Inmunológico: Serología (anticuerpos, cold agglutinins,
aunque no específico).
Molecular: PCR es método preferido por rapidez y
sensibilidad
Laboratorial

Antimicrobianos: Macrólidos
(azitromicina, claritromicina)
como primera línea
No usar beta-lactámicos
(ineficaces por ausencia de
pared celular).
Tratamiento

Vacunación: Actualmente no existe vacuna comercial
disponible.
Otras medidas: Control de brotes en instituciones,
higiene respiratoria, detección y tratamiento
temprano, evitar uso excesivo de antibióticos para
limitar resistencia.
Prevención

Kutty, P. K., et al. (2024). Clinical and epidemiologic features of Mycoplasma pneumoniae among hospitalized adults. Recuperado de PubMed:
https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/39628678/ PubMed
Waites, K. B., et al. (2017). Mycoplasma pneumoniae from the respiratory tract and beyond. American Society for Microbiology. Recuperado de
PubMed: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28539503/ PubMed
ESGMAC MAPS Study Group. (2025). Global spatiotemporal dynamics of Mycoplasma pneumoniae re-emergence after COVID-19 pandemic
restrictions: an epidemiological and transmission modelling study. Lancet Microbe, 6(4), 101019. Recuperado de PubMed:
https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/40024259/ PubMed
Watkins, L. K. F., et al. (2017). Epidemiology and molecular characteristics of Mycoplasma pneumoniae-associated Stevens-Johnson
syndrome. Pediatric Infectious Disease Journal. Recuperado de PMC: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC5893500/ PMC
Sun, H., et al. (2015). Epidemiology and clinical profiles of Mycoplasma pneumoniae infection in infants. International Journal of Clinical and
Experimental Medicine, (LRTI). Recuperado de PubMed: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/25957828/ PubMed
Xu, M., et al. (2024). Molecular epidemiology of Mycoplasma pneumoniae infections in Wuhan after the COVID-19 outbreak. Recuperado de
PubMed: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38229068/ PubMed
Espinoza-Camacho, D., Monge-Ortega, O. P., & Sedó-Mejía, G. (2018). Síndrome de Stevens-Johnson atípico inducido por Mycoplasma
pneumoniae: un reto diagnóstico. Revista Alergia México, 65(4), 437–441. Recuperado de SciELO México: http://www.revistaalergia.mx SciELO
México
Escobar, M. F., et al. (2005). Detección de Mycoplasma pneumoniae mediante PCR – in vitro hybridization en niños con infección respiratoria.
Revista mexicana de investigación, (año y volumen si disponibles), pp. Recuperado de SciELO México: https://www.scielo.org.mx/scielo.php?
pid=S0187-75852005000400002&script=sci_arttext SciELO México
Merida-Vieyra, J. (2017). Cambiando los paradigmas de la infección por Mycoplasma pneumoniae en pediatría. Recuperado de SciELO
México: vacunación y otras medidas profilacticas
Romero-Cabello, R. (2018). Microbiología y parasitología médicas (5a ed.). México: Editorial Médica Panamericana.
Bibliografía
Tags