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APICULTURA EN TROPICO- ALIMENTACION DE COLMENAS A BASE DE JARABES DE AZUCAR EN EPOCA DE SEQUIAS, ESTO LLEVANDO A LA BUENA PRODUCCIONDE ABEJAS EN LOS CENTROS DE PRODUCCION,

1. "EVALUACIÓN DE LA PREFERENCIA DE
CONSUMO DE JARABES DE SACAROSA
EN DIFERENTES CONCENTRACIONES
(1:1 Y 2:1) EN COLONIAS DE APIS
MELLIFERA MEDIANTE EL MÉTODO
WASHOUT EN EL MÓDULO DE
APICULTURA DE LA ESCUELA
PROFESIONAL DE ZOOTECNIA
TROPICAL - F.C.A. – UNCP”
DOCENTE:
CONTRERAS RODRIGUEZ, JAVIER
HUGO
PRESENTADA POR:
BARRIENTOS MENDOZA,JOEL
ELIEZER

2. INTRODUCCIÓN
La apicultura constituye una de las actividades
zootécnicas más importantes en la sostenibilidad
agroecológica y económica de diversas regiones del
país, especialmente en la selva alta y media, donde las
condiciones climáticas favorecen la floración continua
y la producción de néctar. En este contexto, el manejo
nutricional de las abejas (Apis mellifera) es un factor
determinante para mantener la productividad de las
colonias durante los periodos de escasez de recursos
florales.
La suplementación artificial mediante jarabes
azucarados representa una práctica esencial para
garantizar el equilibrio energético de las colmenas y
evitar la pérdida de población o disminución en la
postura de la reina. Entre las opciones más utilizadas
se encuentran los jarabes de sacarosa en distintas
concentraciones, los cuales simulan la disponibilidad
natural de néctar, favoreciendo el mantenimiento de
la colonia y su capacidad de producción.

3. RESUMEN DEL
PLAN DE
TRABAJO
El presente trabajo de investigación titulado “Evaluación
de la preferencia de consumo de jarabes de sacarosa en
diferentes concentraciones (1:1 y 2:1) en colonias de Apis
mellifera mediante el método Washout”, se desarrollará
en el Módulo de Apicultura de la Escuela Profesional de
Zootecnia Tropical – F.C.A. – UNCP, con el propósito de
determinar la preferencia alimenticia de las abejas frente
a distintas concentraciones de jarabe de sacarosa.

4. "Evaluación de la Preferencia
de consumo de jarabes de
sacarosa en diferentes
concentraciones (1:1 Y 2:1) en
colonias de Apis Mellifera
mediante el método Washout
en el Módulo de Apicultura de
la Escuela Profesional de
Zootecnia Tropical - F.C.A. -
UNCP.”
TITULO:

5. En la actualidad, la producción de carne
bovina enfrenta diversos desafíos que afectan
la eficiencia y rentabilidad de las
explotaciones ganaderas. Uno de los
principales problemas radica en la
alimentación de los bovinos, que en muchos
casos se basa en forrajes de baja calidad y en
concentrados costosos. Esta situación no solo
limita el potencial de ganancia de peso de los
animales, sino que también incrementa los
costos operativos, afectando la sostenibilidad
económica de las fincas.
4. PLANTEAMIENTO Y FORMULACIÓN
DEL PROBLEMA
4.1. Planteamiento del problema

6. 4.2. Formulación del problema
4.2.1. Problema General:
¿Cuál de las concentraciones de jarabe de sacarosa (1:1 o 2:1)
presenta mayor preferencia de consumo en colonias de Apis
mellifera (abeja melífera) mediante la aplicación del método
Washout en el módulo de apicultura de la Escuela Profesional
de Zootecnia Tropical – F.C.A. – UNCP?
4.2.2. Problemas específicos
¿Cómo varía el consumo promedio de
jarabe entre las concentraciones 1:1 y 2:1
durante el periodo experimental?
¿Existe diferencia significativa en la
estabilidad y respuesta de las abejas
durante las fases de aplicación y descanso
del método Washout?
¿Cuál concentración de jarabe de
sacarosa permite un mejor
aprovechamiento energético y menor
desperdicio de alimento?

7. H1.1: Las colonias de Apis mellifera presentarán un
consumo promedio significativamente mayor con el
jarabe de sacarosa en concentración 1:1 en
comparación con el jarabe 2:1.

H1.2: Las colonias alimentadas con la concentración de
jarabe más eficiente mostrarán una mayor actividad
forrajera, evidenciada por un incremento en la
frecuencia de entrada y salida de abejas en el periodo
experimental.
H1.3: El método Washout permitirá obtener resultados
confiables al evitar la contaminación cruzada entre
tratamientos y reflejar diferencias reales en el
comportamiento alimenticio de las colonias.
5.HIPÓTESIS
5.1.Hipótesis General
H0: La concentración del jarabe de sacarosa
suministrado (1:1 o 2:1) no influye
significativamente en la preferencia de
consumo ni en la actividad forrajera de las
colonias de Apis mellifera mediante el
método Washout.

H1: La concentración del jarabe de sacarosa
suministrado (1:1 o 2:1) influye
significativamente en la preferencia de
consumo y en la actividad forrajera de las
colonias de Apis mellifera mediante el
método Washout, siendo una de las
concentraciones más atractiva y estimulante
para la actividad de las abejas.
5.2. Hipótesis Específicos

8. 6. OBJETIVOS
6.1. OBJETIVO GENERAL
6.2. OBJETIVO ESPECIFICOS
Evaluar la preferencia de consumo y la actividad forrajera de las
colonias de Apis mellifera frente a jarabes de sacarosa en diferentes
concentraciones (1:1 y 2:1) mediante el método Washout, en el
módulo de apicultura de la Escuela Profesional de Zootecnia Tropical –
F.C.A. – UNCP, con el fin de determinar la concentración más eficiente
para la alimentación suplementaria en periodos de escasez de néctar.
Determinar la mayor preferencia de consumo de jarabes de sacarosa por las colonias
de Apis mellifera en las concentraciones 1:1 y 2:1.
Evaluar la actividad forrajera de las colonias durante el periodo experimental en
relación con el tipo de jarabe suministrado.
Analizar el comportamiento alimenticio de las abejas frente a las diferentes fuentes
energéticas, para establecer la concentración más eficiente en la suplementación
nutricional.
Determinar la cantidad de jarabe consumido por las colonias de Apis mellifera en
función de las diferentes concentraciones de sacarosa (1:1 y 2:1).

9. 7. MARCO TEORICO
7.1. ANTECEDENTES
INTERNACIONALES
7.1.1. Efecto de la concentración de
jarabes de sacarosa en el consumo y
comportamiento de abejas melíferas.
7.1.2. Comparación de productividad en
colonias de abejas alimentadas con
diferentes jarabes energéticos.
(ABDELLA ET AL., 2024) Realizaron un estudio
experimental sobre la preferencia alimenticia de
Apis mellifera frente a diferentes concentraciones
de azúcares simples (sacarosa, glucosa y
fructosa). Los resultados indicaron que las abejas
mostraron una marcada preferencia por la
sacarosa, especialmente en concentraciones
moderadas (entre 40 y 60 %), ya que
proporcionaba una fuente de energía más estable
y fácil de digerir.
(SAMMATARO ET AL., 2013) Evaluaron colonias de
abejas alimentadas con jarabe de sacarosa, jarabe de
maíz de alta fructosa y jarabe invertido, determinando
que las colonias suplementadas con sacarosa
mantuvieron un desarrollo más equilibrado y menor
incidencia de mortalidad adulta. El estudio concluyó
que la sacarosa constituye el mejor sustituto energético
del néctar natural, siempre que se prepare con
concentraciones adecuadas para evitar fermentación o
cristalización.

10. 7.2. ANTECEDENTES NACIONALES
7.2.1. Efecto de la alimentación artificial con
jarabe de azúcar en el crecimiento
poblacional de abejas.
7.2.2. Uso de dietas artificiales y su
influencia en el desarrollo de colonias.
(LÓPEZ HURTADO, 2014) Desarrolló una investigación en
Yurimaguas (Loreto) donde comparó el efecto del jarabe de
azúcar con el jugo de caña sobre el desarrollo de colonias de
Apis mellifera. Los resultados mostraron que las colonias
alimentadas con jarabe de sacarosa aumentaron
significativamente el número de cuadros con cría y reservas
alimenticias, especialmente durante la época de escasez floral.
(MONTERO, 2012) Realizó un experimento en la Universidad
Nacional Agraria La Molina (Lima) en el que se probaron
diferentes dietas energéticas y proteicas. Entre los
tratamientos se incluyó el jarabe de sacarosa en distintas
proporciones (1:1 y 2:1), observándose que el jarabe 1:1
estimuló la postura de la reina y la expansión de la cría,
mientras que el jarabe 2:1 favoreció el acopio de reservas.
Esto demuestra que la concentración del jarabe puede tener
efectos diferenciados según la etapa fisiológica de la colonia.

11. 7.3. ANTECEDENTES REGIONALES
7.3.1. Estudio sobre la alimentación
suplementaria en colonias de Apis mellifera
en Satipo.
7.3.2. Caracterización de la producción
apícola en la región Junín.
(MENDOZA ROJAS, 2018) Ejecutó un trabajo en apiarios de
Satipo, evaluando el efecto del jarabe de azúcar en la actividad
forrajera y desarrollo de la cría. Los resultados mostraron que
las colonias alimentadas con jarabe de sacarosa 1:1
presentaron una mayor actividad de pecoreo y una mejor tasa
de supervivencia de larvas en comparación con aquellas sin
suplementación.
MERCADO URDANIVIA, 2014) realizó un estudio en ocho
distritos de la región Junín, donde se identificó que los
apicultores locales utilizan el jarabe de azúcar como suplemento
energético durante épocas de baja floración, aunque sin un
protocolo estandarizado sobre concentración o frecuencia de
suministro. El estudio resalta la necesidad de investigaciones
experimentales que determinen las concentraciones más
adecuadas para las condiciones tropicales de la selva central.

12. 7.4. BASES TEÓRICAS
7.4.1. NUTRICIÓN COMPLEMENTARIA Y
ALIMENTACIÓN SUPLEMENTARIA EN APIS
MELLIFERA
7.4.2. PREFERENCIA DE CONCENTRACIÓN
DE AZÚCARES Y COMPORTAMIENTO
ALIMENTICIO EN ABEJAS
La nutrición de las colonias de Apis mellifera no se limita
únicamente al néctar y polen que recolectan naturalmente; en
condiciones de escasez floral, es común que los apicultores
recurran a la alimentación suplementaria para mantener la
vitalidad de la colonia.
Existe evidencia científica de que las abejas poseen
mecanismos sensoriales finos que les permiten distinguir entre
distintas concentraciones de azúcar y decidir cuál solución
consumir. Değirmenci et al. (2023) describen cómo los
receptores gustativos de Apis mellifera interpretan la
concentración de azúcar del néctar para guiar sus decisiones
de forrajeo, diferenciando entre soluciones más diluidas y más
concentradas.
7.4.3. EFECTOS FISIOLÓGICOS DEL TIPO DE
JARABE EN LAS ABEJAS OBRERAS
La calidad del jarabe ofrecido no solo incide en la
preferencia, sino también en la fisiología interna de las
abejas. Lazarov et al. (2025) evaluaron los efectos de
distintos jarabes sobre el desarrollo del cuerpo graso (fat
body) en obreras de Apis mellifera macedonica, y
encontraron que las soluciones tipo 1:1 generaron una
mejor distribución del tejido graso respecto a otras mezclas
más densas, lo cual puede relacionarse con la eficiencia
metabólica y la capacidad de reservas de energía.
7.4.4. ACTIVIDAD FORRAJERA Y SU
IMPORTANCIA EN LA COLONIA
La actividad forrajera constituye uno de los principales
indicadores del estado nutricional y fisiológico de una colonia
de Apis mellifera, ya que refleja el esfuerzo colectivo por
recolectar néctar, polen y agua para mantener el equilibrio
energético de la colmena. Según Free (1993), la intensidad del
pecoreo está influenciada por factores ambientales,
disponibilidad floral y, especialmente, por las reservas
internas de alimento.

13. 8. TIPO DE INVESTIGACIÓN
8.1. INVESTIGACIÓN EXPERIMENTAL
8.2. INVESTIGACIÓN APLICADA
El diseño experimental se basa en la comparación directa de dos colonias (A y B) bajo condiciones controladas,
aplicando el método Washout, que permite eliminar efectos residuales entre tratamientos. Este enfoque facilita
determinar con precisión la relación entre la concentración del jarabe y la respuesta conductual de las abejas,
expresada en su frecuencia de consumo, dinámica poblacional y comportamiento de pecoreo.
La investigación es también aplicada, porque sus resultados buscan ofrecer una solución práctica para el
manejo alimenticio de las colonias durante periodos de escasez floral. Los hallazgos servirán como base para
optimizar la suplementación energética en apiarios de la selva central del Perú, contribuyendo a mejorar la
productividad, sostenibilidad y rentabilidad apícola.

14. 8.3. Diseño de la Investigación
El presente trabajo sigue un diseño cuasi-experimental y
comparativo, donde se evaluarán dos tratamientos con jarabes
de sacarosa de diferente concentración (1:1 y 2:1) para
determinar la preferencia de consumo en colonias de Apis
mellifera.
8.3.1. Diseño Cuasi-experimental:
El diseño cuasi-experimental se caracteriza porque no se aplicará
una asignación completamente aleatoria de las colonias, pero sí se
trabajará con un número representativo de colmenas del módulo
de apicultura de la E.P. de Zootecnia Tropical – F.C.A. – UNCP.
Las colmenas seleccionadas serán de condiciones similares en
cuanto a población, edad de la reina, y estado sanitario, con el fin
de reducir la variabilidad que pueda afectar los resultados.
8.3.2. Comparativo:
Colmena A (Tratamiento 1): Jarabe de sacarosa 1:1.
Colmena B (Tratamiento 2): Jarabe de sacarosa 2:1.
Colmena C (Control): Sin suplementación (alimentación
natural)
Las colmenas A y B recibirán los tratamientos en fases
cruzadas (Washout). La colmena C permanecerá sin
alimentación suplementaria durante todo el estudio para
servir de referencia del comportamiento natural y de línea
base.

15. 8.4 Temporalidad del Estudio
Diseño Longitudinal: El estudio tendrá una duración total de
40 días, estructurado bajo un diseño longitudinal con
aplicación del método Washout para evaluar la preferencia de
consumo de jarabes de sacarosa en diferentes
concentraciones (1:1 y 2:1) en colonias de Apis mellifera. El
método Washout permite que cada colmena tratada reciba
ambos tratamientos en diferentes momentos, separándolos
por un periodo de “lavado” o descanso sin jarabes,
garantizando que los resultados no se vean influenciados por
el tratamiento anterior.
8.5 Variables del Estudio
· VARIABLES INDEPENDIENTES:

Tipo de alimentación suplementaria proporcionada a las colonias de Apis
mellifera, expresada en las siguientes concentraciones de jarabe de
sacarosa:
Jarabe de sacarosa 1:1:(una parte de azúcar por una parte de agua).
Jarabe de sacarosa 2:1:(dos partes de azúcar por una parte de agua).
Sin suplementación: (grupo control, alimentación natural).

·VARIABLES DEPENDIENTES:

Estas variables reflejarán la respuesta biológica y comportamental de las
abejas ante los diferentes tratamientos alimenticios:
Consumo de jarabe (mL/día): Cantidad promedio de jarabe ingerido
por cada colonia durante los periodos de tratamiento.
Actividad forrajera (abejas/minuto): Número de abejas que entran y
salen de la colmena por minuto durante los horarios de observación.
Superficie de cría (cm²): Área ocupada por celdas con cría abierta o
sellada, determinada mediante conteo fotográfico semanal.
Reserva alimenticia (miel/polen): Cantidad de panales ocupados por
miel y polen al final de cada fase experimental.
Comportamiento general de la colonia: Nivel de agresividad,
organización y respuesta al manejo.
Condiciones ambientales complementarias: Temperatura y humedad

16. 8.6. Grupo de Estudio
El estudio incluirá un total de tres colmenas de Apis
mellifera, distribuidas en dos grupos experimentales y un
grupo control:
Colmena A: Tratamiento con jarabe de sacarosa 1:1.
Colmena B: Tratamiento con jarabe de sacarosa 2:1.
Colmena C: Grupo control, sin suplementación
energética.

Todas las colmenas estarán bajo condiciones de manejo y
ambiente similares, asegurando que las diferencias
observadas se deban únicamente al tipo de jarabe
suministrado.
8.7. Fases del Diseño Experimental
8.7.1 Fase de Pre-experimentación:
Selección y revisión sanitaria de las tres colmenas participantes
(Colmena A, Colmena B y Colmena C).
Evaluación inicial del estado de la reina, cantidad de abejas
obreras, superficie de cría y reservas alimenticias, para establecer
la línea base de comparación.
Instalación de los alimentadores internos tipo Doolittle en las
colmenas correspondientes a los tratamientos.
Preparación y estandarización de los jarabes de sacarosa 1:1 y 2:1.
8.7.2. Fase Experimental:
Aplicación del método Washout durante 40 días, con periodos
de alimentación diferenciados y descansos entre tratamientos.
Suministro controlado de los jarabes energéticos según la
concentración asignada a cada colonia.
Monitoreo diario de consumo, comportamiento y actividad
forrajera de las abejas.
Registro semanal de la superficie de cría, reservas de miel y
polen, y observaciones sobre el comportamiento de la colonia.
8.7.3. Fase de Post-experimentación:
Evaluación final del desarrollo poblacional, superficie de cría,
reservas alimenticias y comportamiento de las colonias.
Comparación de resultados entre las colmenas tratadas y la
colmena control.
Análisis de la preferencia de consumo y del impacto de los
jarabes sobre la actividad forrajera y estabilidad de las
colonias.

17. 8.8. Población y Muestra
8.8.1. Población:
La población estará constituida por colonias de abejas melíferas
(Apis mellifera) del módulo de apicultura de la Escuela Profesional
de Zootecnia Tropical – F.C.A. – UNCP.
8.8.2. Muestra:
La muestra estará conformada por tres colmenas activas,
distribuidas en:
Colmena A: Jarabe de sacarosa 1:1.
Colmena B: Jarabe de sacarosa 2:1.
Colmena C: Control (sin suplementación).
Todas las colmenas serán seleccionadas con criterios de similitud
en fuerza poblacional, presencia de reina activa y superficie de cría
inicial, garantizando condiciones homogéneas.

18. 9. MATERIALES Y METODOS:
9.1. Lugar de Ejecución:
El presente proyecto de investigación se llevará a cabo en el
Módulo de Apicultura de la Escuela Profesional de Zootecnia
Tropical, perteneciente a la Facultad de Ciencias Agrarias de la
Universidad Nacional del Centro del Perú (UNCP).
9.1.1. Ubicación Politica:
· Departamento : Junín
· Provincia : Satipo
· Distrito : Rio Negro
· Lugar : UNCP-Ciencias Agrarias
9.1.2. Ubicación Geografica:
· Altitud : 1100 m.s.n.m.
Coordenadas UTM
· Norte 0542738
· Este 8759860
9.1.3. Clima:
· Temperatura promedio : 26.8°C
· Precipitación promedio anual : 2100 mm.
· Humedad : 86%

19. 9.2. Material Biologico:
El material biológico empleado en el estudio estará
conformado por colonias de abejas melíferas (Apis mellifera)
pertenecientes al Módulo de Apicultura de la Escuela
Profesional de Zootecnia Tropical – F.C.A. – UNCP.
9.2.1. Colmenas experimentales:
· Especie: Apis Mellifera (Abeja Melifera).
· Cantidad: 3 colmenas activas
Colmena 1 (Tratamiento 1): Se suministrará jarabe de sacarosa en
concentración 1:1.
Colmena 2 (Tratamiento 2): Se suministrará jarabe de sacarosa en
concentración 2:1.
Colmena 3 (Control): No recibirá suplementación con jarabe, sirviendo
de control.

Condición de las colmenas: Las colonias seleccionadas se encontrarán en
buen estado sanitario, con reinas activas, cría operculada y población de
abejas adultas suficiente.
Selección: Se priorizarán colmenas con fuerza similar y características
homogéneas (población, reservas y postura) para garantizar resultados
comparables.
Revisión sanitaria: Se realizará una inspección previa para descartar
presencia de enfermedades o plagas (Varroa destructor, Loque americana
o europea).

20. 9.2. Material Biologico:
El material biológico empleado en el estudio estará
conformado por colonias de abejas melíferas (Apis mellifera)
pertenecientes al Módulo de Apicultura de la Escuela
Profesional de Zootecnia Tropical – F.C.A. – UNCP.
9.2.1. Colmenas experimentales:
· Especie: Apis Mellifera (Abeja Melifera).
· Cantidad: 3 colmenas activas
Colmena 1 (Tratamiento 1): Se suministrará jarabe de sacarosa en
concentración 1:1.
Colmena 2 (Tratamiento 2): Se suministrará jarabe de sacarosa en
concentración 2:1.
Colmena 3 (Control): No recibirá suplementación con jarabe, sirviendo
de control.

Condición de las colmenas: Las colonias seleccionadas se encontrarán en
buen estado sanitario, con reinas activas, cría operculada y población de
abejas adultas suficiente.
Selección: Se priorizarán colmenas con fuerza similar y características
homogéneas (población, reservas y postura) para garantizar resultados
comparables.
Revisión sanitaria: Se realizará una inspección previa para descartar
presencia de enfermedades o plagas (Varroa destructor, Loque americana
o europea).

21. 9.3. Material de manejo apícola9.2.2. Jarabe de Sacarosa:
Se utilizará jarabe de sacarosa preparado con azúcar
blanca refinada y agua potable, en dos
concentraciones diferentes:
Tratamiento 1: Jarabe de sacarosa 1:1 (una parte
de azúcar por una parte de agua).
Tratamiento 2: Jarabe de sacarosa 2:1 (dos partes
de azúcar por una parte de agua).
· Velos y trajes apícolas completos (con gorro
protector)
· Guantes de cuero para apicultura
· Botas de jebe
· Ahumador metálico con fuelle de cuero
· Palanca o espátula apícola
· Cepillo apícola
· Cuchillo desoperculador
· Alzas melarias
· Bastidores (marcos) con panales de cera
· Caja colmena tipo Langstroth (con fondo, cámara de
cría, tapa y piquera)
· Alimentadores internos tipo “Boardman” y tipo
“bandeja”
· Trampas antirrábano o antiácaros (si es necesario el
control preventivo)
· Balde para recolección de jarabe residual
· Regla graduada o probeta para medir consumo del
jarabe

22. 9.4. Material de elaboración y
alimentación
·Cocina a gas (2 hornillas)
·Balón de gas doméstico (10 kg)
·Encendedor o fósforos
·Toallas y paños de limpieza
·Trapos absorbentes y papel toalla
·Detergente y esponjas
·Baldes para agua y limpieza
·Mesa de apoyo para mezcla y pesado
·Fuente de agua o tanque de almacenamiento
Bolsas de basura y contenedores plásticos
INSUMOS PRINCIPALES:
Azúcar blanca refinada (sacarosa)
Agua potable limpia
RECIPIENTES DE PREPARACIÓN:
Ollas de acero inoxidable o aluminio de 10–15
litros
Cucharones o paletas de madera para mezcla
Recipientes plásticos con tapa hermética (para
almacenamiento del jarabe)
Bidones o botellas de 2–5 litros (para transporte
del jarabe al apiario)
UTENSILIOS DE MEDICIÓN:
Balanza digital (precisión ± 0.01 g)
Probeta graduada (1 litro)
Jarras medidoras (500 ml – 2 litros)
Termómetro (para control de temperatura del
agua)
OTROS ACCESORIOS:
Embudos plásticos grandes
Coladores finos (para filtrado del jarabe)
Etiquetas y marcadores (para identificación de
tratamientos y fechas)
9.5. Material de cocina y apoyo
logístico
9.6. Material de seguridad e
higiene
· Mascarillas protectoras
· Gafas o caretas de seguridad
· Guantes de nitrilo o látex (para manipular urea o azúcar
caliente)
· Botiquín de primeros auxilios
· Alcohol al 70% yodado y antiséptico
· Extintor de fuego (tipo ABC)
· Señalización preventiva en el área de trabajo
· Bolsas para desecho biológico

23. 9.7. Equipos tecnológicos:
· CELULAR:
Descripción: Dispositivo móvil.
Uso: Para tomar fotografías y documentar el proceso, así como
para la comunicación y coordinación del equipo de trabajo.
· LAPTOP:
Descripción: Computadora portátil.
Uso: Para el registro y análisis de datos, redacción de informes y
almacenamiento de información relevante del estudio.
· LAPICEROS Y CUADERNOS:
Descripción: Material de papelería.
Uso: Para anotar observaciones, registrar datos y llevar un
seguimiento del progreso del estudio.
· BALANZA:
Descripción: Balanza digital o mecánica.
Uso: Para medir el peso de los bovinos de manera precisa y
registrar las variaciones en la ganancia de peso.
· Fichas de monitoreo:
Descripción: Formularios impresos o digitales para el registro de
datos.
Uso: Para la recolección sistemática de información sobre consumo
de alimento, salud animal y costos
9.8. Material Adicional

24. 10.1. FASE PREVIA (antes del día 1)
·REVISIÓN DOCUMENTAL Y LOGÍSTICA (DÍAS -7 A -3)
Reunir permisos, responsables y plan de trabajo.
Revisar inventario de materiales (alimentadores, azúcar, recipientes, trajes,
ahumador, termohigrómetro, balanza, fichas).
Designar roles: responsable de campo, segundo observador, quien prepara
jarabes, quien procesa datos.
ENTRENAMIENTO DEL EQUIPO (DÍAS -6 A -4)
Capacitar 2 sesiones en: conteo de forrajeo, medición de consumo, inspección
de cría,
uso de fichas, lavado de alimentadores y seguridad.
Practicar conteos de 10 min y estimación de área de cría.
·SELECCIÓN Y EVALUACIÓN INICIAL DE COLMENAS (DÍAS -3 A -1)
Inspección sanitaria: verificar reina activa, cría presente, ausencia visible de
enfermedades (Varroa, Nosema, Loque).
Seleccionar 3 colmenas homogéneas en fuerza y reservas; rotular como A, B, C.
Registrar línea base: fecha, coordenadas, peso de colmena (si aplica), # cuadros
ocupados, área de cría (cm²), % reservas (escala 0–5), conteo forrajero
preliminar (30 min), foto de cada colmena.
Realizar prueba de Varroa (sugar shake) si es posible; anotar.
·PREPARACIÓN DEL ÁREA Y SEGURIDAD (DÍA -1)
Nivelar bases, asegurar separación ≥2 m entre colmenas, señalizar área.
10. METÓDO

25. 10.2. PERÍODO DE
ACLIMATACIÓN (Días 1–5)
Objetivo: homogeneizar estado nutricional y
conducta de colmenas antes de iniciar tratamientos.
ACTIVIDADES DIARIAS:
Inspección rápida (reina, cría, agresividad).
Registro ambiental (temp. y HR) mañana y tarde.
Alimentación ligera si hace falta con jarabe estándar
(solo si las colmenas lo requieren), registrando
cantidades.
Entrenamiento final de observadores en terreno.
10.3. PREPARACIÓN DE TRATAMIENTOS
(antes de Fase Experimental I)
· ELABORACIÓN DE LOTES DE JARABE
Preparar lotes frescos en cocina:
1:1 → 1 kg azúcar + 1 L agua (mezclar hasta disolver).
2:1 → 2 kg azúcar + 1 L agua.
Control de temperatura (45–60 °C) para disolución; enfriar antes de envasar.
Etiquetar: lote, fecha, concentración, responsable.
Conservación: usar en ≤24–48 h, refrigerar si sobra.
· PREPARACIÓN DE ALIMENTADORES
Limpiar y desinfectar (agua caliente + detergente; enjuagar; alcohol 70%).
Etiquetar alimentadores por colmena y tratamiento.
Verificar estanqueidad y flujo controlado.

26. 10.4. FASE EXPERIMENTAL I (Días 6–15) — 10 días
· ASIGNACIÓN INICIAL (DÍA 6)
Colmena A → Jarabe 1:1.
Colmena B → Jarabe 2:1.
Colmena C → Control (sin jarabe o alimentación natural).
· RUTINA DIARIA (CADA DÍA DE LA FASE)
Llegada y preparación (07:30–08:00): equipo, EPP, fichas.
Registro inicial en ficha: fecha, hora, observador, temp., HR, estado general.
Medición y colocación alimentador:
Medir volumen exacto (p. ej. 500 ml) y anotar volumen inicial. Colocar en
colmena A y B. Colmena C no recibe.
Conteo actividad forrajera: realizar conteo estandarizado (entradas/salidas)
09:00–09:30 (3 x 10 min por colmena). Registrar.
Inspección rápida: observar comportamiento, agresividad, polinización activa
(sin abrir si no es necesario).
Retiro y medición del alimentador (a las 48 h o 24 h según protocolo): medir
volumen sobrante → calcular consumo. Registrar.
Limpieza: limpiar alimentadores usados si se van a reutilizar; anotar lotes
usados.
Registro sanitario: observar larvas, postura, mortalidad diaria en frontal de
colmena (contar abejas muertas).
· INSPECCIONES SEMANALES DETALLADAS (DÍA 11)
Abrir colmena con calma: contar cuadros ocupados, tomar fotos de cría,
estimar área de cría (cm²), registrar reservas miel/polen.
Realizar prueba Varroa si se programó.

27. 10.5. WASHOUT / PERÍODO DE LAVADO
(Días 16–25) — 10 días
10.6. FASE EXPERIMENTAL II (Días 26–35) — 10 días
OBJETIVO:
Eliminar efecto residual del sabor/memoria de jarabe previo.
ACCIONES:
Retirar alimentadores y no suministrar jarabe por 10 días.
Las colmenas solo tendrán recursos naturales.
Limpieza y desinfección profunda de alimentadores y
recipientes (agua caliente + jabón; enjuagar; alcohol).
Etiquetar como limpios.
Monitoreo diario: actividad forrajera, comportamiento,
mortalidad y estado sanitario.
Registrar posibles eventos externos (floración masiva,
fumigaciones).
· INTERCAMBIO DE TRATAMIENTOS
Ø Colmena A ← ahora recibe Jarabe 2:1 (antes 1:1).
Ø Colmena B ← ahora recibe Jarabe 1:1 (antes 2:1).
Ø Colmena C ← continúa control.
· RUTINA DIARIA
Ø Igual que en la Fase I: medir volumen inicial de
alimentadores, conteos forrajeo, inspección, retiro/medición y
registro.
Ø Mantener las mismas horas, mismas observadores cuando
sea posible.
· INSPECCIÓN SEMANAL DETALLADA (DÍA 31)
Ø Repetir conteos de cuadros ocupados, área de cría, reservas
y foto-documentación.

28. 10.7. FASE FINAL / CIERRE (Días 36–40) — 5
días
10.8. PROTOCOLOS DE MEDICIÓN (resumen
rápido por variable)
·EVALUACIONES FINALES
Registro final del consumo acumulado por colmena y por
tratamiento.
Conteo final de actividad forrajera (dos sesiones por día
para promedio).
Inspección final: # cuadros ocupados, área de cría (cm²),
reservas de miel/polen, mortalidad acumulada.
Prueba Varroa / estado sanitario final.
·LIMPIEZA Y CIERRE
Desinfectar todo el material, envasar registros, respaldar
fotos y hojas de Excel.
Crear carpeta de resultados con fichas escaneadas y fotos.
·REUNIÓN DE CIERRE
Anotar incidencias, validar datos, firmar fichas y asignar
quien procesará análisis.
Consumo jarabe (ml): Volumen suministrado − volumen
sobrante (medir con probeta o pesar alimentador). Registro
diario.
Actividad forrajera (entradas/min): Conteo 30 min (3×10 min);
calcular promedio entradas/min y salidas/min.
Fuerza de colonia: # cuadros ocupados (≥50% cobertura) y área
de cría (cm² por plantilla sobre fotos). Cada 5 días.
Reservas miel/polen: Escala 0–5 por cuadro; foto soporte.
Semanal.
Mortalidad: contar abejas muertas en frontal cada día.
Varroa (%): sugar shake cuando se programe: (% ácaros / #
obreras)×100. Inicial, mitad y final.
Condiciones ambientales: temp. °C y HR % al inicio de cada
visita (termohigrómetro).

29. 10.9. CONTROL DE CALIDAD Y TRAZABILIDAD
10.10. PROTOCOLO DE LIMPIEZA / HIGIENE
(importante para Washout)
Ficha de lote de jarabe: anotar composición, fecha,
responsable; pegar en botella. Registrar lote usado por
colmena cada día.
Registro de incidentes: derrames, fermentaciones, robos,
fumigaciones externas, manipulaciones.
Entrenamiento y doble control: al menos un día por semana
realizar mediciones por dos observadores independientes y
comparar.
Lavar alimentadores con agua caliente y jabón a 60 °C;
enjuagar; desinfectar con alcohol 70% y secar al sol o con
paño limpio.
Desechar jarabe con olor fermentado; anotar lote.
Registrar limpieza en hoja (fecha, responsable).
10.11. SEGURIDAD Y BIENESTAR
Uso obligatorio de EPP (traje, guantes, velo) durante
manipulación.
Horario de manipulación en horas de baja actividad.
Protocolo de respuesta a picaduras severas (evacuación,
epinefrina).
No administrar tratamientos veterinarios a una colmena
experimental salvo emergencia (registrar y reportar).
10.12. ENTREGABLES Y
DOCUMENTACIÓN AL FINAL
Fichas diarias digitalizadas (Excel).
Fototeca por colmena y fecha.
Tabla resumen de consumos por fase y por colmena.
Informe técnico con metodología, resultados,
discusión y recomendaciones.
Base de datos (CSV / Excel) con todos los registros
listos para análisis.

30. 11. METODOLOGÍA PASO A PASO
11.1. FASE 1: PREPARATIVOS (Días -7 a 0)
·PASO 1. PLANIFICACIÓN Y ORGANIZACIÓN DEL EXPERIMENTO
Se elaborará el cronograma de trabajo de 40 días.
Se verificará la disponibilidad del material biológico (3 colmenas
activas de Apis mellifera) y materiales complementarios
(alimentadores, balanza, termohigrómetro, fichas, etc.).
Se conformará el equipo de trabajo y se distribuirán funciones
(preparación de jarabes, monitoreo de consumo, registro de datos y
limpieza).
·PASO 2. REVISIÓN SANITARIA Y SELECCIÓN DE COLMENAS
Se inspeccionarán todas las colmenas del módulo para elegir 3
homogéneas en tamaño, población, reservas y estado de cría.
Se excluirán las que presenten signos de enfermedades (Varroa,
Loque, Nosema).
Se etiquetarán como:
Colmena 1 → Tratamiento 1 (jarabe 1:1)
Colmena 2 → Tratamiento 2 (jarabe 2:1)
Colmena 3 → Control (sin suplementación)

·PASO 3. REGISTRO INICIAL (LÍNEA BASE)
Se registrarán los siguientes parámetros en fichas:
Peso de la colmena (kg)
Número de cuadros ocupados por abejas
Área de cría (cm² estimados)
Reservas de miel/polen (escala 0–5)
Actividad forrajera (conteo de abejas entrando
y saliendo por minuto durante 10 min)
Temperatura y humedad ambiental
·PASO 4. PREPARACIÓN DE MATERIALES
Limpieza y desinfección de alimentadores,
recipientes, baldes y utensilios con agua
caliente y alcohol 70%.
Revisión del equipo de protección personal
(trajes, guantes, velos, botas).
Acondicionamiento del área experimental:
bases niveladas, distancia mínima de 2 m entre
colmenas.

31. 11.2. FASE 2: ELABORACIÓN DE
JARABES (Día 0)
PASO 5. PREPARACIÓN DE JARABES DE SACAROSA
En la cocina del módulo se prepararán dos
concentraciones:
Jarabe 1:1 → 1 kg de azúcar refinada + 1 L de agua
potable.
Jarabe 2:1 → 2 kg de azúcar refinada + 1 L de agua
potable.
El azúcar se disolverá en agua caliente (45–60 °C)
hasta obtener una mezcla homogénea.
Una vez fríos, los jarabes se envasarán en botellas
limpias y etiquetadas (lote, fecha y concentración).
Los jarabes se conservarán a temperatura ambiente
(≤48 h) o en refrigeración.
11.3. FASE 3: PERÍODO DE
ACLIMATACIÓN (Días 1–5)
· PASO 6. ACLIMATACIÓN DE LAS COLONIAS
Se permitirá que las colmenas se estabilicen sin
tratamientos durante 5 días.
Se realizarán observaciones diarias de:
Actividad forrajera natural.
Estado sanitario y comportamiento.
No se suministrará jarabe suplementario (salvo necesidad).
Al final del periodo se registrarán nuevamente las variables
base para confirmar homogeneidad.
11.4. FASE 4: EXPERIMENTO – ETAPA I (Días 6–15)
· PASO 7. INICIO DE LOS TRATAMIENTOS
Se colocarán los alimentadores en las colmenas:
Colmena 1 → jarabe 1:1
Colmena 2 → jarabe 2:1
Colmena 3 → sin jarabe (control)
Se suministrará un volumen conocido (ej. 500 ml) por colmena y se anotará
en la ficha.
· PASO 8. REGISTRO DIARIO DURANTE 10 DÍAS SEGUIDOS:
Medir el volumen inicial y volumen sobrante de jarabe al día siguiente →
consumo = diferencia.
Registrar actividad forrajera (conteo de entradas y salidas/minuto por 10
min).
Anotar condiciones ambientales (temperatura, humedad).
Observar estado de la reina, postura y agresividad.
Registrar mortalidad (abejas muertas frente a la piquera).
· PASO 9. EVALUACIÓN INTERMEDIA (DÍA 10)
Abrir cada colmena para observar:
Área de cría (cm² estimados por plantilla o foto).
Reservas de miel y polen.
Cuadros ocupados.
Registrar resultados en la ficha técnica.

32. PASO 10. RETIRO DE TRATAMIENTOS
Se suspende el suministro de jarabes por 10 días.
Las colmenas solo se alimentan de néctar natural.
Se limpian todos los alimentadores con agua caliente,
detergente y alcohol 70%.
Se monitorea la actividad forrajera natural y la condición
sanitaria de las colonias.
Este periodo permite eliminar el efecto residual del
jarabe previo.
11.5. FASE 5: PERÍODO DE LAVADO –
WASHOUT (Días 16–25)
11.7. FASE 7: EVALUACIÓN FINAL Y CIERRE (Días
36–40)
11.6. FASE 6: EXPERIMENTO – ETAPA
II (Días 26–35)
· PASO 11. INTERCAMBIO DE TRATAMIENTOS
Se intercambian los jarabes entre colmenas:
Colmena 1 → ahora recibe jarabe 2:1.
Colmena 2 → ahora recibe jarabe 1:1.
Colmena 3 → continúa sin jarabe.
Se repite el mismo procedimiento que en la Etapa I
(consumo, forrajeo, registros, ambiente).
· PASO 12. EVALUACIÓN INTERMEDIA FINAL (DÍA 30)
Se vuelve a evaluar área de cría, reservas, cuadros
ocupados y comportamiento general.

· Paso 13. Evaluación final
Se realizan las siguientes mediciones:
Consumo total acumulado de jarabe por tratamiento.
Promedio de actividad forrajera.
Estado sanitario (revisión Varroa y mortalidad total).
Área final de cría, número de cuadros ocupados y reservas.
· Paso 14. Limpieza y cierre
Limpieza completa de alimentadores y utensilios.
Registro y respaldo de todas las fichas en formato digital.
Elaboración del informe de resultados preliminares.
· Paso 15. Análisis y presentación
Se procesarán los datos (promedios, desviación estándar y
comparación entre tratamientos).
Elaboración de tablas y gráficos finales para discusión de resultados.

33. 12. CRONOGRAMA
DE ACTIVIDADES
DEL PROYECTO:

35. 13. PRESUPUESTO

37. 14. REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS:
1. Andrade, R. D., & Torres, R. (2016). Efecto de la adición de jarabes de sacarosa y fructosa en el comportamiento reológico de miel de abejas.
Información Tecnológica, 27(1), 3-https://www.scielo.cl/scielo.php?pid=S071807642016000100002&script=sci_arttext
2. Al-Ghamdi, A. A., Al-Mazroa, M. A., & Al-Malki, A. L. (2021). Effects of sugar feeding supplemented with three plant extracts on some parameters of
honey bee colonies. Saudi Journal of Biological Sciences, 28(4), 2076-2082. https://doi.org/10.1016/j.sjbs.2021.02.050
3. López Hurtado, J. (2014). Diagnóstico del potencial en la explotación comercial de la abeja melífera (Apis mellifera L.) en la provincia de Chupaca, Junín,
Perú. Tesis de licenciatura, Universidad Nacional del Centro del Perú. Recuperado de
https://repositorio.unc.edu.pe/bitstream/handle/20.500.14074/3468/DIAGN%C3%93STICO%20DEL%20POTENCIAL%20EN%20LA%20EXPLOTACI%C3%93
N%20COMERCIAL%20DE%20LA%20ABEJA%20MEL%C3%8DFERA%20%28Apis%20mellifera%20L.%29%20EN.pdf?isAllowed=y&sequence=1
4. Mercado Urdanivia, J. (2014). Diagnóstico del potencial en la explotación comercial de la abeja melífera (Apis mellifera L.) en la provincia de Chupaca,
Junín, Perú. Tesis de licenciatura, Universidad Nacional del Centro del Perú. Recuperado de
https://repositorio.unc.edu.pe/bitstream/handle/20.500.14074/3468/DIAGN%C3%93STICO%20DEL%20POTENCIAL%20EN%20LA%20EXPLOTACI%C3%93
N%20COMERCIAL%20DE%20LA%20ABEJA%20MEL%C3%8DFERA%20%28Apis%20mellifera%20L.%29%20EN.pdf?isAllowed=y&sequence=1
5. Mendoza Rojas, J. (2018). Evaluación de la miel de abejas (Apis mellifera) producida y comercializada en el departamento del Atlántico. Recuperado de
https://www.academia.edu/130129192/Evaluaci%C3%B3n_de_la_miel_de_abejas_Apis_mellifera_producida_y_comercializada_en_el_departamento_del_A
tl%C3%A1ntico
6. Montero, A. (2012). Dietas artificiales en la crianza de la abeja melífera, Apis mellifera. Anales Científicos, 73(1), 1-
5.https://revistas.lamolina.edu.pe/index.php/acu/article/view/863
7. Sammataro, D., & Avitabile, A. (2013). The Beekeeper's Bible: Bees, Honey, Recipes & Other Home Uses. Hachette UK.
8. León Ceras, J. (2008). La apicultura en el Perú: Situación actual y perspectivas. Revista Peruana de Biología, 15(2), 123-130.
https://www.scielo.org.pe/scielo.php?pid=S1727-99332008000200003&script=sci_arttext

38. 15. ANEXO 1: Matriz
de consistencia

40. GRACIAS