Punciones

1. CUIDADOS RELACIONADOS CON
PUNCIÓN VENOSA PERIFÉRICA
E.U. VALENTINA PINTO PINCHART.
2008

2. OBJETIVOS:
1.Prevención de Infecciones Intrahospitalarias asociadas la punción
venosa (Precauciones estándar).
2.Objetivos de la Punción Venosa Periférica (PVP).
3.Educar y preparar adecuadamente al paciente.
4.Conocer distintos métodos de extracción o punción venosa.
5.Conocer los materiales necesarios para una correcta PVP.
6.Conocer los distintos tubos utilizados en la extracción de sangre para
exámenes de laboratorio.
7.Conocer los cuidados relacionados con una PVP exitosa.

3. CONTENIDOS
1.Conceptos Básicos: Asepsia y antisepsia.
2.Precauciones estándar.
3.Vías de administración de medicamentos (generalidades).
4.Punción Venosa Periférica:
1.Catéter Venoso Periférico.
1.Sitios anatómicos donde se puede realizar una Punción
Venosa Periférica (PVP).
2.Materiales necesarios para realizar una PVP.
3.Pasos para realizar una PVP.
2.Punción Venosa para Extracción de Sangre para Exámenes
de Laboratorio.
5.Complicaciones Asociadas a PVP.

4. Conceptos Básicos: Asepsia Y Antisepsia
•ASEPSIA: Ausencia de toda clase de microorganismos patógenos y de
materia séptica. Sin infección. La técnica aséptica consiste en la
utilización de materiales estériles (libres de microorganismos patógenos,
no patógenos y esporas).
•FINES DE LA ASEPSIA: Evitar la infección iatrógena producida
básicamente por el personal sanitario.
•ANTISEPSIA: Conjunto de procedimientos destinados a impedir la
colonización o destruir los gérmenes patógenos, en especial por medio
de agentes químicos. Técnica antiséptica, utilizamos materiales libres de
microorganismos patógenos y no patógenos, pero éstos no están libres
de esporas. Se utilizan desinfectantes o antisépticos. Lo que se pretende
es prevenir / atacar la infección.

5. •Infecciones que ocurren durante la permanencia o concurrencia de un
paciente al hospital y que no estaban presentes ni se encontraban en
su estado de incubación al ingreso.
•Las IIH pueden originarse de fuentes endógenas o exógenas:
•INFECCIONES ENDÓGENAS: Son aquellas causadas por
microorganismos que forman parte de la flora del huésped.
•INFECCIONES EXÓGENAS: Son aquellas causadas por microorganismos
de fuentes animadas o inanimadas del hospital.
FLUIDOS BIOLÓGICOS: Son todas las secreciones o líquidos biológicos,
fisiológicos o patológicos, que se producen en el organismo. (Líquido
cefalorraquídeo, líquido sinovial, líquido pleural, líquido peritoneal,
líquido pericárdico, líquido amniótico, etc.).
Infecciones Intrahospitalarias (IIH):

6. LAS PRECAUCIONES ESTÁNDARES SE DEBEN APLICAR A TODOS LOS
FLUIDOS DE ALTO RIESGO QUE SON:
•Sangre
•Secreciones genitales (semen, secreciones vaginales)
•Fluidos corporales provenientes de cavidades normalmente
estériles
• Cualquier otro fluido secreción o excreción con sangre visible.
Éstas normas dadas por el Ministerio de Salud, deben ser aplicadas
por todos los miembros del equipo de salud, en cualquier lugar
donde se otorgue algún tipo de atención, es decir en cualquier
hospital, clínica particular, consulta médica o dental, laboratorios,
hogares de ancianos etc.

7. Implica a todos los pacientes, independiente de su diagnóstico o
patología infecciosa. Como mencionamos en los objetivos, su
finalidad es tanto la protección de los pacientes, como de todo el
personal que los atiende, logrando una atención eficaz, protegida y
de buena calidad.
Las Precauciones Estándares son:
•Lavado clínico de manos
•Uso de guantes
•Equipo de protección personal, lentes, máscaras, pecheras, gorros.
•Manejo de la ropa contaminada
•Manejo del material cortopunzante.

8. •Intrapleural
•Intraarticular
•Intracavitaria
•Epidural
•Intratecal
•Intracisternal
•Intracardiaca
•Intradérmica
•Subcutánea
•Intramuscular
•Endovenosa
•Intraósea
•Intraarterial
•Intracoronaria
•Intraperitoneal
Vías Parenterales de Administración de Medicamentos.

9. Vía Intradérmica
Prueba de Mantoux (Tuberculina).

10. Vía Intradérmica
•Esta vía llega al tejido dérmico; en él hay poco riego sanguíneo, y
la absorción de medicamentos es lenta.
•Es de elección para administración de anestésicos locales,
realización de pruebas diagnósticas (Mantoux), realización
pruebas alérgicas, vacunas, entre otros.
•Una vez inyectado el medicamento se formará una pequeña
“pápula”, que por lo general no sangra al retirar la aguja.

12. Vía Subcutánea

13. •Las inyecciones subcutáneas se aplican en el tejido conectivo
laxo, bajo la dermis.
•La absorción por esta vía es más lenta que vía intramuscular,
debido a que en este tejido hay menor riego sanguíneo.

14. Vía Intramuscular

15. Vía Intramuscular
•La absorción en la vía
intramuscular, se da más lento
que en la administración
endovenosa, pero más rápido
que vía subcutánea, debido a
que la irrigación sanguínea es
mayor en el tejido intramuscular.
•El tejido muscular se encuentra bajo el tejido subcutáneo.

16. Vía Intramuscular
•Las zonas donde se pueden administrar los medicamentos
intramuscularmente son:
Zona deltoídea,
Caras anteriores de los muslos,
Zona ventroglútea y
Zona dorso glútea.
•A la hora de elegir el lugar de punción tendremos en cuenta
la edad del paciente y su masa muscular, la cantidad de
medicamento a inyectar, si es una sustancia más o menos
oleosa, etc.

17. •Zona deltoidea. Está ubicada en la cara externa del deltoides, a tres
traveses de dedo por debajo del acromion. Se debe de tener en cuenta
que el nervio radial pasa cerca de ahí. Admite hasta 2 ml de volumen. El
paciente puede estar prácticamente en todas las posiciones:
sedestación, decúbito supino, decúbito lateral o bipedestación.

18. •Cara anterior del muslo. Admite hasta 5 ml de volumen. Con el paciente en
decúbito supino o en sedestación, delimitaremos una banda
imaginaria que vaya, por la cara externa del muslo elegido, desde el
trocánter mayor hasta la rótula. La zona óptima de inyección está localizada
en esta banda, 5 cm por arriba y 5 cm por debajo de su punto medio. Es la
zona de elección para los niños menores de tres años.

19. •Zona ventroglútea. Es una de las más seguras, ya que no tiene cerca ningún
punto conflictivo. Con el enfermo en decúbito lateral o en decúbito supino,
colocaremos nuestra mano en la base del trocánter mayor del fémur del
lado elegido. A continuación abriremos los dedos de la mano y
pincharemos en el espacio que quede entre los dedos índice y medio.
Admite hasta 5 ml. de volumen. Junto con la dorsoglútea es la de elección
para los niños mayores de tres años.

20. •Zona dorsoglútea. Se localiza en el cuadrante superoexterno de la
nalga, pues así es como se evita lesionar el nervio ciático. Es el lugar
que más fármaco admite: hasta 5 ml. El paciente puede estar en
decúbito lateral, en decúbito prono o en bipedestación (en este
último caso, debe de tener cerca una zona de apoyo por si surge
cualquier complicación). Debe de evitarse su uso en los menores de
tres años.

21. Vía Endovenosa
•Es una técnica invasiva que permite disponer
de una vía permanente de acceso al árbol
vascular del paciente.
•El objetivo principal es la Administración de
medicamentos, fluidoterapia y
hemoderivados, extracción de muestras
sanguíneas, mantenimiento de una vía para
casos de emergencia.

22. Punción Venosa Periférica
•Catéter Venoso Periférico
•Extracción de Sangre para Exámenes de Laboratorio

23. Catéter Venoso Periférico
•La cateterización venosa periférica es la forma de aplicar
tratamiento endovenoso cuando éste no tiene agresividad
excesiva ni duración en el tiempo. Consiste en la canalización de
una vena con una cánula corta o una “mariposa”.
•El objetivo es administrar terapia intravenosa y aplicar tratamiento
con las menores consecuencias iatrogénicas, tanto a nivel
nosocomial como hemodinámico.

24. Zonas Anatómicas de Implantación
•Debe intentarse el abordaje venoso en la zona más distal. En miembros
superiores comenzamos por:
•DORSO DE LA MANO: Tiene la ventaja de que daña mínimamente el árbol
vascular; pero permite diámetros menores de catéter, limita el
movimiento y puede variar el flujo según la posición de la mano.
Las zonas anatómicas de elección
serán las de los miembros superiores,
aunque se puede requerir el acceso
a la yugular externa, las venas de la
cabeza en neonatos, y las de los
miembros inferiores en los casos de
inaccesibilidad de otros vasos.

25. •ANTEBRAZO: Muy cómoda para el paciente y
garantiza un flujo constante; sin embargo
causa un mayor daño al mapa venoso del
miembro superior.
•FLEXURA DEL CODO: Admite mayores
diámetros de catéter y su canalización es fácil.
Presenta el inconveniente de que el daño que
causa al árbol vascular es importante y,
además, puede variar el flujo según la posición
del brazo.
•La canalización de venas de los miembros
inferiores es muy inusual y desaconsejado por
su fragilidad y riesgo de crear o acentuar
problemas de retorno venoso.

26. Catéter Venoso Periférico
•Grosor del Material del catéter: al insertar una vía venosa periférica,
utilizaremos una mariposa o una cánula o catéter venoso periférico,
siendo estos últimos los que más habitualmente se utilizan.
•Al decidir el grosor que vamos a emplear, tendremos en cuenta que
a menor grosor, produciremos menos daño en la íntima venosa.
•El material del que están hechos estos catéteres suele ser
poliuretano, TEFLÓN, y siliconados. El grosor o calibre estándar oscila
entre el 14 G y el 26 G.
•Las agujas están fabricadas e acero inoxidable y su calibre se mide
en Gauges (término inglés que significa “Calibre” y se expresa por
su inicial, G), cuyo valor es inversamente proporcional al grosor de
la aguja.

27. Catéteres Venosos Periféricos
Mariposas

28. VVP: Técnica de Punción
1.Preparar el material necesario.
•Antiséptico.
•Jeringa: Se emplean las de 3 ó 5 mL.
•Torniquete (Ligadura)
•Cánula o Mariposa.
•Gasas o algodón.
•Guantes.
•Telas para fijar catéter.
2.Elegir el lugar de inyección.
3.Realizar punción.

29. VVP: Procedimiento
1.En primer lugar, informaremos al paciente de la necesidad de
canalizarle una vía para aplicarle el tratamiento y le ayudaremos
para adoptar una posición cómoda. Si el paciente es un niño,
evaluaremos la posibilidad de que esté presente la madre o algún
familiar, así como contar con personal auxiliar para ayudar a la
inmovilización del niño.
2.Lavado clínico de manos, colocación de guantes.
3.Exposición de la zona a puncionar. Administrar anestésico tópico si es
necesario.
4.Elección de la vena y tipo de catéter estará en función de las
características de las venas del paciente y el objetivo de la
cateterización intravenosa.

30. 1.Aplicación de un torniquete. La compresión debe ser suficiente
para impedir el retorno venoso pero sin interrumpir la perfusión
arterial. Se aplicará unos 10 cm. por sobre el sitio de inserción
del catéter.
2.La identificación de la vena se debe hacer por palpación y
determinar el trayecto, la movilidad, el diámetro, la fragilidad y
la resistencia a la punción.
3.Nunca se debe canalizar venas con signos de flebitis previas.
4.Aplicación de Antiséptico. Dejar actuar al antiséptico.
VVP: Procedimiento

31. 1.Realizar la punción directamente atravesando la piel por
encima del vaso o hacerlo junto al trayecto venoso y canalizar
a éste después.
2.Introducir la aguja de punción a través de la luz venosa,
comprobando el flujo de sangre.
3.El catéter sobre aguja se introducirá deslizando el catéter sobre
la aguja, sin mover ésta, hasta introducirlo completamente. Se
retira el compresor y la aguja, conectando la cánula del equipo
de perfusión.
Punción y Canalización Venosa

32. 1.En caso de notar resistencia a la progresión del catéter, no debemos
forzar su entrada, ya que podríamos provocar la disección de la
vena. Si es necesaria la extracción, siempre retiraremos
SIMULTÁNEAMENTE la aguja y el catéter, para evitar la posible rotura
de éste y su consiguiente embolización.
2. Tras la conexión con el equipo, conectaremos la perfusión según
indicación, comprobando la permeabilidad de la vía y la ausencia
de tumefacción y dolor, pues son signos de extravasación.
3.Desecharemos las agujas en contenedores especiales. Es peligroso
volver a encapsular las agujas.

33. •Fijaremos el catéter manteniendo las condiciones de asepsia en
el punto de entrada y evitando que posibles tracciones
conlleven a la salida del catéter.
•Evitaremos acodamientos en el catéter y en los sistemas
•Informaremos al paciente de las precauciones que debe tomar
para evitar las desconexiones o salida del catéter.
Fijación del Catéter

35. Extracción de Sangre para Exámenes de Laboratorio
RECOMENDACIONES GENERALES
•Aplicar las normas de bioseguridad
•Lavado de manos y uso de guantes en todos los casos de
manipulación de líquidos corporales.
•Uso de gafas o mascarillas con visera durante la recolección de
muestras con riesgo de salpicaduras.
•No re-enfundar agujas y desecharlas en el recipiente adecuado o
desechar la aguja y la jeringa en un galón destinado para tal fin,
evitando la manipulación.
•Preservar la técnica aséptica en la obtención de muestras mediante
procedimientos invasivos.
•Informar al paciente sobre el procedimiento. Los procedimientos de
recolección de muestras pueden ser molestos y ocasionar dolor.

36. Extracción de Sangre para Exámenes de Laboratorio
Punción Venosa: es el procedimiento que facilita la recogida de muestras
para análisis.
•Para su realización el paciente debe encontrarse sentado
confortablemente antes de comenzar la extracción.
•El paciente deberá extender su antebrazo y apoyarlo firmemente.
•En pacientes encamados o con problemas de mareo puede realizarse
con el paciente acostado.
•La persona que realice al venopunción debe utilizar guantes y si se
conoce que el paciente tiene una enfermedad infecciosa conviene
tomar precauciones generales: uso de mascarilla, delantal, gorro
(cultivos), etc.

37. La vena cubital es la que se utiliza con más
frecuencia en la punción venosa de
adultos ya que es grande, está cercana a
la piel y es la menos dolorosa.
En pacientes con venas difíciles,
maltratadas por haber sufrido extracciones
frecuentes o haber recibidos tratamientos
intravenosos, obesos o en niños, se utilizan
otras venas de la parte posterior del brazo,
las muñecas, las manos, el cuello, los
tobillos o los pies.
Toma de muestras para exámenes: tubos de recolección

38. NO OLVIDAR en Toma de muestras para exámenes
•Verificar rigurosamente con la orden médica el nombre del paciente y
los exámenes a tomar.
• Verificar el tipo de tubos a utilizar antes de tomar la muestra. Las
técnicas de análisis varían en cada institución, por lo tanto, es
importante confirmar con el laboratorio el tipo de tubo, cantidad de
muestra y condiciones específicas de manejo de las muestras.
• Rotular los frascos y tubos con los datos del paciente antes de tomar la
muestra.
• Enviar la muestra al laboratorio en el menor tiempo posible.
•Llenar los tubos al vacío hasta el nivel marcado; es imprescindible que
estén llenos justo hasta la señal.

39. Toma de Muestras para Exámenes: Técnica de Punción
1.Preparar el material necesario.
•Antiséptico.
•Jeringa: Se emplean las de 5 ó 10 mL.
•Torniquete (Ligadura).
•Aguja o Mariposa. De grosor adecuado (21 a 23 G).
•Sistema “Venojet”
•Tubos de exámenes (adecuados para cada examen).
•Gasas o algodón.
•Guantes.
2.Elegir el lugar de inyección.
3.Realizar punción.

40. PROCEDIMIENTO
Toma de Muestras para Exámenes: Técnica de Punción
•Seleccionar la vena y aplicar el torniquete a 4 cm por encima del sitio
que se va a puncionar.
•Limpiar la piel con algodón impregnado en solución antiséptica, sobre
el sitio de la punción, en forma circular del centro a la periferia.
•Puncionar la vena teniendo cuidado en colocar el bisel hacia arriba;
una vez se encuentre seguro de estar en la vena, introducir el tubo de
recolección de muestra y soltar el torniquete.
•Retirar la aguja y hacer presión sobre el sitio de punción hasta que
deje de salir sangre (aproximadamente cinco minutos).
•Enviar las muestras al laboratorio.

41. El sistema de recolección de muestras con
tubos al vacío, consiste en un tubo de vidrio al
vacío con un tapón de plástico blando,
suficiente como para permitir que lo atraviese
una aguja con un poco de fuerza. Existen varios
tipos de Vacutainer® que se diferencian por el
color de su tapón. Cada color de tapón indica
que ese tubo tiene determinado aditivo o no.
Toma de Muestras para Exámenes: Tubos de Recolección

42. •Tubo ROJO sin anticoagulante: utilizado en los análisis de
bioquímica, pruebas de inmunidad y Serología.
•Tubo LILA con EDTA: utilizado para determinaciones de Hematología.
•Tubo NEGRO con citrato: utilizado para medir la VHS.
Toma de Muestras para Exámenes: Tubos de Recolección

43. •Tubo CELESTE con Citrato trisódico: utilizado para pruebas de
caogulación.
•Tubo VERDE con heparina sódica: es utilizado para pruebas de
bioquímica de urgencia.
•Tubo GRIS con oxalato de potasio: utilizado para Glicemia
•Tubo AMARILLO con GEL ACTIVADOR: Es utilizado para
determinaciones de suero en la química.
Toma de Muestras para Exámenes: Tubos de Recolección

44. •Flebitis: inflamación de la vena utilizada, caracterizada por la presencia
de la tétrada inflamatoria: rubor (eritema), tumor (edema), calor y
dolor.
•Hematoma: extravasación de sanguínea en el sitio de punción que
aparece durante o después de la colocación del catéter. Debida a la
perforación de la vena.
•Infiltración: extravasación al tejido celular subcutáneo, de la sustancia
instilada a través del catéter.
•Trombosis: es la oclusión total o parcial de un vaso sanguíneo por un
coagulo de sangre.
•Celulitis: es la inflamación aguda del tejido conectivo de la piel que
resulta de una infección generalmente por estafilococos, estreptococos
u otras infecciones bacterianas.
Complicaciones asociadas a Punción Venosa

46. 1.Artieda MC, Jiménez M. Técnicas de venopunción. En: Arribas JM,
Caballero F. Manual de Cirugía Menor y otros Procedimientos en la
Consulta del Médico de Familia. Madrid: Merck Sharp & Dohme;
1993.
2.Esteve J, Mitjans J. Enfermería. Técnicas clínicas. Madrid: McGraww-
Hill Interamericana; 2002.
3.Perry A, Potter PA. Guía clínica de enfermería. Técnicas y
procedimientos básicos. 4ª ed. Madrid: Harcourt Brace; 1998.
4.Botella M, Hernández OM, López ML. Rodríguez A. Cuidados
auxiliares de enfermería. Técnicas básicas de enfermería.
Administración de medicamentos. Santa Cruz de Tenerife:Gobierno
de Canarias, Consejería de Educación, Cultura y Deportes; 2002;
p.435-60.
BIBLIOGRAFÍA