Extraciones venosas-arteriales-y-capilares

1. EXTRACIONES VENOSAS, ARTERIALES Y CAPILARES E.P. NANCY CASTILO E.E.G. PAULINA QUIÑONEZ M. E.E.G. DIANA GARCIA E.E.G. ROSA LUPIO E.E.G. FABIOLA TRUJILLO

2. EXTRACCION VENOSA

3. CONCEPTO Consiste en recoger muestras sanguíneas para el análisis de la sangre en el laboratorio.

4. OBJETIVO Obtener una muestra de sangre para conocer los elementos normales de la sangre. Determinar la presencia de tóxicos y otras sustancias en la sangre. Vigilar y controlar el equilibrio acido – base en la gasometría venosa. Aislar el agente infeccioso en los estudios bacteriológicos.

5. SITIOS DE PUNCION Cuero cabelludo: venas superficiales del cráneo Cuello: yugular externa. Axila: vena axilar. Fosa ante cubital: vena basílica, cefálica y mediana. Antebrazo: vena radial, cubital y mediana. Mano: venas dorsales de la mano. Tobillo: safena interna y externa. Pie: venas dorsales del pie.

6. MATERIAL Guantes desechables Palomillas con sistema de vacío Vacutainer Tubos de vacío Frascos de hemocultivo Jeringa para gasometría o heparinizada Torundas Ligadura Jeringa con aguja Etiquetas adhesivas (curitas)

7. PROCEDIMIENTO Preparar el material Identificar al niño Explicar a la madre el procedimiento que vamos a realizar. Lavado de manos Colocarse los guantes Colocar cómodamente e inmovilizar al niño Colocar ligadura

8. Seleccionar el vaso mediante el tacto Desinfectar el punto de punción con torundas alcoladas

9. Para recogida de hemocultivo se colocan guantes estériles y se usa gasas estériles con clorhexidina acuosa al 2%. Pinchar la piel y posteriormente la vena en dirección contraria al flujo sanguíneo en un ángulo entre 15 y 30 grados respecto a la piel.

10. Soltar la ligadura cuando refluya la sangre. Conectar el frasco de hemocultivo al sistema de trasvase.

11. Colocar la palomilla en la campana o adaptador de vacío. Conectar el sistema de trasvase al tubo para recoger la cantidad de sangre deseada.

12. Cambiar de tubos

13. Si se recogiera sangre para gasometría venosa: Sacar la aguja y aplicar presión suave hasta lograr hemostasia Colocar apósito en el sitio de punción.

14. Etiquetar los tubos para su envío al laboratorio, con la petición correspondiente. Retirar el material usado Lavado de manos Registrar el procedimiento en la historia de enfermería.

15. COMPLICACIONES Sangrado excesivo por el punto de punción Formación de hematomas Infecciones por perdida de integridad de la piel Punciones múltiples para localizar las venas Laceración de arteria o nervio adyacente Trombosis o embolia en punción de grandes vasos Desmayo o sensación de mareo

16. OBSERVACIONES Mantener asepsia durante la extracción. Provocar el menor traumatismo posible en el sitio de punción Cambiar de aguja en caso de fallo en la punción No extraer sangre de una vena donde este canalizado un goteo, ya que la muestra estaría diluida y no daría valores reales. No pinchar en zonas con infección local o hematomas

17. No pinchar venas profundas en niños con alteración de coagulación No aplicar ninguna solución antiséptica sobre el tapón del hemocultivo No tapar los frascos de hemocultivo con algodón. Presionar unos 5 minutos hasta hacer hemostasia, en la zona de punción. Vigilar inflamación, calor o sangrado en el sitio de punción.

18. EXTRACCION DE MUESTRAS POR PUNCION CAPILAR

19. CONCEPTO Consiste en la recogida de una muestra de sangre para el análisis realizado por micro método: bilirrubinemias, glucemias, hematocrito, etc. , a partir de la punción capilar. Es un procedimiento habitual en recién nacidos y lactantes.

20. OBJETIVO Obtener una muestra de sangre, evitando la venopucnion para: Conocer el hematocrito y bilirrubina capilar Determinación rápida de la glucemia Determinación de las pruebas metabólicas (hipotiroidismo y fenilcetonuria) en el R/N Conocer el pH, gases y equilibrio acido-base de la sangre.

21. SITIOS DE PUNCION Lateral extremo o interno del talón Caras laterales de las falanges distales de los dedos de la mano.

22. MATERIAL Y EQUIPO Guantes Lanceta Capilares de micro hematocrito Plastilina para sellar los capilares Tubos microtainer para recogida de muestras Tiras reactivas para la determinación de glucosa capilar Aparato de determinación de glucemia

23. Papel de filtro especial para pruebas metabólicas Torunda alocadas Aposito y/o gasas Palangana con agua caliente Etiquetas identificativas

24. PROCEDIMIENTO Lavado de manos con agua y jabón Colocación de guantes Calentar el pie del cual se va a extraer sangre introduciéndolo en una palangana con agua templada con el fin de producir vasodilatación incrementando así el flujo sanguíneo

25. Sujetar el talón con los dedos pulgar e índice Secar con una compresa y desinfectar con torundas alcoladas. Puncionar con una lanceta enérgica y perpendicularmente al lateral externo o interno del talón.

26. Presionar de forma intermitente el talón para favorecer la formación de la gota de sangre.

27. Rellenar los capilares de micro hematocrito (evitando burbujas de aire), tubo de micro muestra o tira reactiva tomando sangre de la gota que se forma espontáneamente.

28. Para la recogida de las metabolopatias, se necesita impregnara los círculos de las tarjetas (papel de filtro especial).

29. Limpiar y comprimir el sitio de punción. Colocar apósito o gasa anudada al talón.

30. Sellar los capilares de hematocrito con plastilina en un extremo o tapar el tubo de micro muestra.

31. Etiquetar las muestras para su envió al laboratorio, con la petición correspondiente. Retirar el material usado Lavado de manos Registrar el procedimiento en la historia de enfermería.

32. COMPLICACIONES Infecciones de tejidos blandos Infecciones en el hueso (osteomielitis) Celulitis por formación de abscesos Sangrado excesivo por el punto de punción Formación de hematomas.

33. OBSERVACIONES Evitar zonas frías de punción No pinchar en la curvatura posterior del talón, la distancia entre el hueso y la piel es mínima pudiéndose lesionar el hueso. No pinchar en zonas con infección local o hematomas. No pinchar con vasoconstricción periférica o cianosis.

34. No pinchar en niños edematosos En preescolares y escolares se elegirá preferentemente los laterales de los dedos como zona de punción. No presionar junto a la punción, al producirse hemolisis se mezclan fluidos intersticiales e intracelulares con la sangre alterando los resultados.

35. No existen diferencias significativas entra la glucemia capilar despreciando o no la primer gota. Evitar la entrad e aire en el capilar, ya que podía falsear resultados Utilizar capilares haparinizados para evitar la coagulación de la muestra.

36. EXTRACCION DE SANGRE ARTERIAL

37. CONCEPTO La punción arterial es un procedimiento destinado fundamentalmente a la extracción de sangre arterial, en especial para determinar la presión parcial de oxigeno PaO2 y el recambio sanguíneo parcial.

38. OBJETIVO Para determinar los gases de sangre arterial Para estudio de laboratorio, cuando no es posible obtener muestra de sangre venosa o capilar. Para ciertos estudios especiales, tales como la determinación de amonio. Para la extracción de sangre en el recambio sanguíneo parcial.

39. SITIOS DE PUNCION Punción radial Punción arteria temporal superficial Punción arteria humeral Punción arteria tibial posterior

40. EQUIPO Y MATERIAL Bandeja o riñón estéril Torundas de algodón alcoladas Material para hemostasia: gasa estéril y tela adhesiva cortada para el efecto Jeringas : de 1 ml para muestra de gases en sangre arterial, heparinizada y rotulada con nombre, servicio, sala, cama, FIO2 y temperatura del RN.

41. Jeringa de 5ml para otros exámenes solicitados si los hubiere. Guantes Frascos para exámenes adicionales

42. TEST DE ALLEN Prueba que permite evaluar el suministro sanguíneo de las arterias colaterales de la arterial radial.

43. PASOS Hacer que el paciente cierre el puño mientras se ocluyen las arterias radial y cubital Hacer que el paciente abra su mano Dejar de comprimir la arteria cubital El color debe volver a la mano del paciente en 15 segundos En caso contrario elija otro sitio para realizar la punción arteria.

44. PROCEDIMIENTO Lavado clínico de manos, recolectar material y verificar su esterilidad, prepara riñón con técnica aséptica y trasladar a la unidad del RN. Lavado clínico de manos, inmovilizar al paciente, colocación de guantes. Elegir el sitio de punción mediante palpación de pulso arterial humeral o radial

45. Asepsia de piel y puncionar sitio en ángulo de 45 grados sin ligar Cubrir sitio de punción con gasa estéril y tela adhesiva. Eliminar material usado Lavado clínico de manos

46. Punción de la arteria radial: puncionar en 45 grados. En prematuros pequeños: puncionar 15 y 20 grados. Punción de la arteria pediadorsal: punción entre 15 y 20 grados Punción de la arteria tibial posterior: puncionar en 45 grados.

47. CONTRAINDICACIONES Alteración de la coagulación, trombocitopenia Compromiso de la circulación en extremidades, shock. Arteria inapropiada, que sea fácil de colapsarse. Infección en el área de punción

48. CUIDADOS DE ENFERMERIA Evitar puncionar zonas enrojecidas con ´presencia de infección y dolor excesivo, hematomas, quemaduras o piel alterada. Procurar mover la aguja, así evitaremos lesiones en los tejidos y catéter lo menos posible, extravasación de la arteria por el catéter o aguja.

49. Efectuar la inserción con las máximas medidas de asepsia evitando a transmisión de microorganismos. Presionar durante 5 minutos la zona de punción para evitar sangrado o la formación de hematomas posterior a la punción. Observar la aparición de posibles complicaciones en el paciente para actuar a tiempo.

50. GRACIAS !

51. http://www.eccpn.aibarra.org/temario/seccion2/capitulo33/capitulo33.htm