Familia rhabdoviridae

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About This Presentation

Caracteristicas de la Familia Rhabdoviridae o rabdovirus. Ademas algunos datos de los géneros Lyssavirus y Vesiculovirus.


Slide Content

Universidad Nacional Pedro Ruíz Gallo Facultad de Ciencias Biológicas Escuela Profesional de Biología   Virología Contreras Mogollón Hans J. FAMILIA RHABDOVIRIDAE Lambayeque, Abril del 2015

Viriones en forma de bala Sus propiedades más importantes son: CARACTERISTICAS 75nm de diámetro x 180 nm de longitud Nucleocápside Helicoidal ARNss polaridad negativa Envoltura lipídica ( Heum , 2009) – Microscopia electrónica de Virus de la Rabia. Disponible en: http://www.austincc.edu/microbio/2421c/rv.htm Variedad de huéspedes

Ephemerovirus Novirhabdovirus Cytorhabdovirus Nucleorhabdovirus CLASIFICACIÓN Clase V 6 géneros Lyssavirus Vesiculovirus Virus de la rabia Virus de la Estomatitis vesicular Virus de la Fiebre efímera bovina Virus de Necrosis hematopoyética infecciosa Virus Necrótico de la Lechuga Virus del enanismo de la papa

1) fijación del virus 2) penetración por endocitosis 3) fusión del virus con la membrana del endosoma , liberando su nucleocapside en el citoplasma celular 5) transcripción del RNA genómico en ARNm 4) pérdida de la cubierta de la nucleocápside REPLICACIÓN ( Jawetz , 2009) - Replicación de rhabdovirus  

Glicosilación de la proteína G Traducción en el Retículo endoplasmático rugoso

7) el RNA de sentido negativo se incorpora a la proteína N, P y L = Nucleocapside 8 ) Las nucleocápsides se unen a la proteína matriz (M) en la superficie celular 9 ) Liberación por gemación 6) Replicación del RNA genómico de sentido negativo ( Jawetz , 2009) - Replicación de rhabdovirus  

GÉNERO LYSSAVIRUS – VIRUS DE LA RABIA Siglo IV a. C . ya se conocía el peligro de los perros rabiosos, que podían transmitir la enfermedad por medio de la saliva cuando mordían. Siglo I a.C. se pensaba que la causa era un parásito que se alojaba en el frenillo lingual del perro, por lo tanto se utilizó como tratamiento una técnica para cortarlo. Pasteur (6 de julio de 1885) aplico la primera vacuna antirrábica.

CLASIFICACIÓN Serotipos del género Lysavirus . Disponible en: Familia Rhabdoviridae . Universidad Complutense de Madrid.  

PROPIEDADES

PATOGENIA

Cantidad del inoculo Lugar de entrada Distancia entre lesión y SNC La edad del huésped La tasa de mortalidad es mayor y el periodo de incubación más corto en las personas mordidas en la cara o la cabeza, la mortalidad es menor en las personas mordidas en las piernas. La susceptibilidad y tiempo de incubación depende de:

Corpúsculos de Negri Inclusiones citoplasmáticas eosinófilas , formados por acumulación de proteínas virales. ( Unicamp , 2003) - Corpúsculos de Negri

SUSCEPTIBILIDAD DE LOS ANIMALES SUSCEPTIBILIDAD DE LAS ESPECIES Muy grande Grande Moderada Baja Zorros Coyotes Chacales Lobos Hamsters Zorrillos Mapaches Gatos Murciélagos Conejos Bovinos Perros Ovejas Cabras Caballos Primates no homínidos Zarigüeyas ( Jawetz , 2009) - Susceptibilidad de los animales a la rabia.  

CUADRO CLÍNICO Período de incubación en humanos es de 1 a 2 meses, pero puede ser tan breve como una semana o tan prolongado como varios años. .

EPIDEMIOLOGÍA La rabia se presenta en dos formas epizoóticas: urbana (perros y gatos) y selvática (vida silvestre). Más del 90% de los casos la rabia se disemina a los seres humanos por la mordedura de un perro doméstico. El perro es el reservorio principal de la rabia urbana. Los principales reservorios de la rabia silvestre incluyen al murciélago hematófago , zorro, lobo, chacal, mapaches. En el Perú el reservorio principal de rabia silvestre es el murciélago hematófago Desmodus rotundus o " vampiro”. Casos probables o confirmados de rabia humana, así como los casos confirmados de rabia en animales, son de notificación inmediata y obligatoria.

DIAGNÓSTICO Premortem Los métodos diagnósticos para la fase neurológica e incluso prodrómica son basados en la patogénesis de la enfermedad. Pruebas RT-PCR Inmunofluorescencia o ELISA indirecto: Detección de anticuerpos. Impronta de córnea   Saliva   Biopsia de piel:  Se toma piel de la nuca a la altura del nacimiento del cabello, de 10 mm de diámetro y que incluya dermis (folículos pilosos ). Suero: Pacientes no vacunados L íquido cefalorraquídeo ( LCR)

Postmortem Diagnostico rápido Detección de Cuerpos de Negri : Coloración de Sellers . A partir de encéfalo. Inmunoperoxidasa : detección de antígenos en tejidos y células. Prueba de anticuerpos fluorescentes: Inmunofluorescencia directa. Inmunoprecipitación Corpúsculos de Negri en cerebro de animal infectado. Inmunofluorescencia en cerebro de perro infectado con el virus de la rabia

Aislamiento viral Diagnostico lento Inoculación intracerebral en ratones lactantes Inoculación en cultivos celulares: Líneas celulares BHK-21: células de riñón de Hamster neonato. Neuro-2a: neuroblastomas de cerebro de ratón

PREVENCIÓN Vacuna de células diploides humanas (VCDH): Vacuna absorbida contra la rabia (VAR): Vacuna purificada de células de embriones de pollo Vacuna de tejido nervioso Vacuna de embrión de pato Virus atenuados ultrafiltración y se inactiva con β- propiolactona . inactivado con β- propiolactona y concentrado por absorción al fosfato de aluminio . cepa de Flury LEP fijada y cultivada en fibroblastos de pollo Adaptados para crecer en embrión de pollo. Solo para animales

Vacunación pre-exposición Vacunación post-exposición

GÉNERO VESICULOVIRUS – VIRUS DE LA ESTOMATITIS VESICULAR 4 tipos causan Estomatitis Vesicular virus tipo Indiana virus tipo New Jersey virus tipo Alagoas virus tipo Cocal

Temperatura Inactivado a 58°C durante 30 min pH Estable entre pH 4,0 y 10,0 Productos químicos : Sensible al éter y otros disolventes orgánicos Desinfectantes Destruido por formalina (1%) Supervivencia Sobrevive durante largos períodos a temperaturas bajas 173 nm de ancho PROPIEDADES

SENSIBILIDAD del HUESPED Sensible Resistente Ganado Bovino, Porcino y Equino Ovejas Cabras Son resistentes y rara vez muestran síntomas de la enfermedad. SUSCEPTIBILIDAD DEL HUESPED

TRANSMISION Insectos flebótomos, mosquitos y otros insectos hematófagos. Contacto Directo con animales infectados (saliva o liquido de las vesículas) Fomítes objetos contaminados

CUADRO CLÍNICO Vesículas, pápulas, erosiones y ulceras Alrededor de la boca, lengua, encías, patas, ubre y prepucio (CFSPH, 2009) – Erosión cutánea en ubre (CFSPH, 2009) – Ulceración en labio inferior

La lesiones pueden causar: S alivación excesiva Perdida de peso Disminución de la ingesta de agua Cojera Inflamación de orificios nasales y hocico M astitis por infecciones secundarias

DIAGNOSTICO La Estomatitis Vesicular es difícil diferenciar clínicamente de otras enfermedades vesiculares, como la fiebre aftosa o glosopeda (FA), el exantema vesicular porcino (EVP) y la enfermedad vesicular de los cerdos (EVC ). MUESTRAS: L íquido de las vesículas Saliva Membranas mucosas afectadas, colectadas al principio de la enfermedad . Suero PRUEBAS INMUNOLOGICAS Enzimoinmunoensayo ( ELISA) Fijación del complemento (FC) PCR Inmunofluorescencia .

Aislamiento del virus Inoculan de las mismas muestras en cultivos celulares: Riñón de mono verde africano (Vero ) Riñón de hámster neonato (BHK-21) Riñón de cerdo (IB-RS-2) En embriones de pollo de 8 – 10 días: cavidad alantoideo En ratones lactantes de 2 – 7 días

PREVENCIÓN Vacuna bivalente inactivada con BEI ( Etileninmina binaria ), por vía intramuscular en bovinos. Á reas hiperendémicas cada seis meses, Á reas endémicas repetir aplicaciones a los sesenta días y continuar la vacunación cada seis meses. La primera aplicación de la vacuna debe realizarse a los tres primeros meses de edad en los bovinos

EPIDEMIOLOGÍA El virus de la Estomatitis Vesicular es mantenido en nichos ecológicos estables en Centro, Norte y Sur América, en áreas del sudeste de Estados Unidos y México. La Estomatitis Vesicular puede ser considerada endémica en climas cálidos. En el 2007 Tanto en Venezuela como en Colombia la dispersión de la EV fue considerable y junto a Perú, representaron los países con mayor número de reportes de focos de infección.

PROFILAXIS