Fiebre de embarque en vacas lecheras

Al final de la presentación se muestra la literatura citada.

1. Fiebre de embarque E.MVZ.ZYANYA ERANDI VILLEDA MONTES Universidad Autónoma Agraria Antonio Narro

2. INTRODUCCION Aunque el estrés por transporte no siempre produce una enfermedad, aumenta la susceptibilidad de los animales a ciertas enfermedades (Villegas y col. 2014 ). SINONIMOS: Neumonía. Pasteurelosis pulmonar. Fiebre de viaje. Septicemia hemorrágica. Complejo respiratorio ( Villegas y col. 2014).

3. DEFINICION La Fiebre de Embarque, es un término general utilizado para la neumonía que se presenta en el ganado recientemente manejado o transportado de un lugar a otro (Aguilar y col. 2011 ). A fectan a animales de cualquier edad, aunque son más frecuentes en animales de 6 meses a 2 años de edad, la morbilidad y la mortalidad varían entre el 50% al 100 % (Quiroz, 2010).

4. ETIOLOGIA A gentes causales pueden ser Pasteurella multocida (Septicemia hemorrágica) o Mannheimia haemolitica (pasteurelosis neumónica) y Haemophilus somnus ( Juárez y col. 2002 ). La enfermedad ocurre generalmente en dos formas, como una enfermedad septicémica aguda con alta morbilidad y mortalidad o como una infección crónica localizada en articulaciones y senos infraorbitarios (Sánchez y col. 2015).

5. PASTEURELOSIS La Pasteurelosis es una enfermedad que puede ser producida por las bacterias Pasteurella multocida y la Pasteurella haemolytica (Dungworth, 1992). Pasteurella: Es el agente causal de uno de los síndromes clínicos más comunes en el ganado. Es una Bacteria Gram negativa con forma de bastón y anaerobia facultativa (Sanz, 1992).

6. NEUMONIA Agentes bacterianos mas comúnmente encontrados en las neumonías de becerras son: Pasteurella multocida serotipos A y D, Mannheimia haemolitica, Haemophilus somnus, entre otros (Sánchez y col. 2015). Disminución en la ganancia diaria de peso. Falta de desarrollo corporal al llegar a la edad adulta. Riesgo de transmisión a otros animales. Costo de la medicación de los animales enfermos (Sánchez y col. 2015 ).

7. EPIDEMIOLOGIA Se reporta que 50% de las muertes debidas a pasteurelosis neumónica se presentan repentinamente sin que los animales hayan presentado signos clínicos. Se presenta en ganado joven entre 6 meses y 2 años de edad. La enfermedad ocurre entre 7 y 10 días después de que un lote de ganado ha arribado (Bisurco y col. 2007).

8. FACTORES DE RIESGO Para que un animal presente neumonía no se requiere únicamente que entre en contacto con los agentes infecciosos específicos, sino que se necesita de la presencia de ciertas condiciones ambientales que faciliten el desarrollo de la lesión pulmonar (Carrillo, 2013). H acinamiento o mezcla de animales de diferentes edades y niveles inmunológicos en las explotaciones Calor o frio excesivo

9. Transportes prolongados I nstalaciones con ventilación deficiente P resencia de concentraciones elevadas de polutantes en el aire Cambios bruscos de alimentación etc . Elevada humedad relativa “Estrés” ( Guadarrama y col. 2010 ).

10. SIGNOS CLINICOS La enfermedad aparece entre los 10 a 14 días después de que el ganado ha sido sometido a tensiones debilitantes (De León y col, 2002 ). Muertes súbitas (jóvenes) Depresión Respiración acelerada Descargas nasales Temperatura 40-41 °C Somnolencia (De León y col, 2002).

11. DIAGNOSTICO La pasteurelosis neumónica es una bronconeumonía aguda, toxémica, con fiebre elevada, pero que responde bien al tratamiento en sus fases primarias. La rinotraqueitis infecciosa bovina se perciben discretas lesiones en los ollares, traqueítis, tos ruidosa y fiebre elevada. En el caso de la neumonía intersticial aguda de tipo epidémico, los brotes se dan cuando el ganado ha sido cambiado a otros terrenos de pastoreo ( Trigo, 1987 ).

12. La pleuroneumonía contagiosa bovina es parecida en su cuadro a la pasteurelosis, sin embargo, ocurre como plaga y hay una severa y dolorosa pleuroneumonía. La neumonía se caracteriza por disnea, tos y temperatura moderada, siendo poco significativa la toxemia. (Aguilar, 2010).

13. TRATAMIENTO A ntimicrobianos de uso común (oxitetraciclina, penicilina), 85 o 90% se recuperará dentro de las siguientes 24 horas (Jaramillo y col. 2009 ). Tratamiento intensivo (2 veces diarias) hasta por 3 o 5 días. Puede administrarse cualquiera de los siguientes medicamentos : Oxitetraciclina, 10 mg/kg de peso vivo al día, 3-5 d. Penicilina G procaínica, 45,000 UI/kg de peso, 3-5 d. Sulfametacina (preparado líquido ) (Walter y col. 2011).

14. CONTROL B uenas medidas de manejo asociadas al uso de biológicos Vacunación y antibióticos para un brote P re acondicionamiento de animales pre destete D escansar cada 8-12 horas de viaje y recibir agua y heno a intervalos de 24 horas. I dentificación e incorporación de extractos de antígenos específicos de Pasteurella para el desarrollo de vacunas (Rivadeneira, 2012).

15. PREVENCION En ganado lechero estabulado: vacunar con bacterina comerciales. En ganado de carne: combinada con antígenos clostridiales. Se recomienda aplicar la bacterina 15- 20 días antes de someter a los animales a situaciones de estrés, cuando sea posible. Si la transportación es inminente, mejor aplicar antibiótico de amplio espectro y larga acción, antes, durante o inmediatamente al llegar los animales a su destino (Latorre, 1998).

16. LITERATURA CITADA Walter , R. Yacachury, N. Streitenberger, A. Quiroga, L. Fazzio. 2011. Lesiones anatomopatologicas de bovinos en engorde a corral de un establecimiento en la provincia de buenos aires. Suplemento Técnico Veterinario. 54-59. Jaramillo, C. Trigo, F. Suarez, F.2009. Mannheimiosis bovina: etiología, prevención y control. Vet, Mex, 40(3). 293-314. De león, A. Ramos, Y. Izquierdo, N. Rodríguez, E. 2002. Análisis de la presentación de pasteurelosis bovina. Rev., prod, anim. Vol. 14. No.2. 57-60. Sanz, F. 1992. Detection of viral haemorrhagic septicaemia virus by direct imunoperoxidase with selected anti-nucleo· protein monoclonal antibody. Bull. Eur. Ass. Fish Pathol., 12(4) ,116. Ávila, B. 2014. Efectos del estrés por transporte en la bioquímica sanguínea, biometría hemática y expresión de genes de citosinas en vaquillas. Universidad autónoma de nuevo león. Escobedo, N.L, México. 1-40. Bisurco, B. Sanz, F. Estepa, A. Barrera, J. 2007. La septicemia hemorrágica viral de la trucha: modelo para estudios de vacunación por subunidades. Biotecnología. Vol. 5. No 11. 8-11. Quiroz, M. 2010. Neumonía en becerras. Departamento de Producción Animal: Rumiantes, Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Universidad Nacional Autónoma de México. Cano, P. 2010. Clasificación clínica y tratamientos del complejo respiratorio bovino. Facultad de medicina veterinaria y zootecnia, UNAM, Departamento de producción animal: rumiantes. Aguilar, F. 2010. Complejo respiratorio infeccioso de los bovinos productores de carne. Centro Nacional de Investigación Disciplinaria en Microbiología Animal-Instituto Nacional de Investigaciones Forestales Agrícolas y Pecuarias. Toluca, Cuajimalpa 05110, México, D.F. Trigo, J. 1987. El complejo respiratorio infeccioso de los bovinos y ovinos. Toluca, Cuajimalpa 05110, México, D.F. 1-37.

17. Ramírez, D. 2010. Diagnóstico y prevención de enfermedades en la ganadería doble propósito. Cuadernos Científicos Girarz 9.Ediciones Astro Data S.A. Maracaibo, Venezuela. 69-80. Latorre, A. 1998. La enfermedad respiratoria bovina: consideraciones para el tratamiento y control. Ganadería y salud animal, Especial vacuna de carne. 46-50. Mendoza, L. 2012. Principales enfermedades del complejo respiratorio en bovinos. División regional de ciencia animal. 1-59. Carrillo, M. 2013. Utilización de lectinas en la inhibición de la adhesión de Pasteurella multocida. Rev. Med. Vet. ISSN 0122-9354: N. º 25. PP. 93-107. Rivadeneira, J. 2012. Complejo Respiratorio Bovino. Universidad de cuenca facultad de ciencias agropecuarias escuela de medicina veterinaria y zootecnia. PP. 1-150. Romero, M. Uribe, L. Sánchez, J. 2011. Biomarcadores de estrés como indicadores de bienestar animal en ganado de carne. Biosalud. Volumen 10 No. 1.Pp 71 – 87. Guadarrama, G. León, L. Alonso, D. 2010. Evaluación de la capacidad inmunogénica y protectora de antígenos de Pasteurella multocida, obtenidos de aislados de casos clínicos. Vet. Mex, 41 .Vol. 2. PP. 101-110. Romero, J. Jaramillo, J. Martínez, F. 2012. Frecuencia de aislamientos de Mannheimia haemolytica y Pasteurella multocida en becerras con signos clínicos de enfermedad respiratoria, en un complejo lechero del estado de Hidalgo, México. Vet. Mex, 43. Vol.1. Pp. 1-8. Sánchez, Y. Leiva, O. Cordero, M. 2015. Caracterización molecular de cepas de Pasteurella multocida aisladas del ganado bovino. VacciMonitor .Vol.2. Pp.79-85. Villegas, A. Campuzano, V. Hernández, R. 2014. Caracterización de los tipos capsulares de Pasteurella multocida en exudado faríngeo de bovinos productores de carne clínicamente sanos en el estado de Querétaro. Número especial Vet. Mex. Pp. 19-28. Juárez, F. Trigo, F. Chávez, G. Vargas, R. 2002. Identificación de agentes virales por inmunohistoquímica en enfermedades respiratorias de bovinos en corral de engorda. Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Universidad Autónoma de Sinaloa. Pp. 1-13. Aguilar, F. Jaramillo, L. Morales, J. 2011.Evaluación de la protección contra la pasteurelosis neumónica, en corderos vacunados con diferentes antígenos de Pasteurella haemolytica A1. Vet, Mex. Vol. 3. Pp. 221-229.

18. GRACIAS POR SU ATENCION