MICOPLASMOSIS AVIAR.pptx

Micoplasmosis aviar

La Micoplasmosis aviar es una enfermedad que primeramente involucra al aparato respiratorio, seguido del sistema reproductivo y luego el articular. La micoplasmosis es causada por varias especies de bacterias patógenas del género de Mycoplasma (Gonzales, 2016).

1. Integrantes Yessica Ramírez Amaya - 710928 Astrid Jimena Ortiz Galvis - 710955 Astrid Dayana Mora Angarita – 710925 Docente Miriam Meza Quintero Universidad Francisco de Paula Santander Ocaña Facultad de Ciencias Agrarias y del Ambiente Zootecnia Ocaña, Colombia Abril, 2022 MICOPLASMOSIS AVIAR

2. La Micoplasmosis aviar es una enfermedad que primeramente involucra al aparato respiratorio, seguido del sistema reproductivo y luego el articular. La micoplasmosis es causada por varias especies de bacterias patógenas   del género de  Mycoplasma (Gonzales, 2016). Micoplasmosis aviar Género: Mycoplasma Familia: gallisepticum Fuente: KEPRO (2022)

3. Enfermedad Respiratoria Crónica. C.R.D. E.R.C. 2. Sinónimos

4. 3. Importancia Económica Las cepas de MS con tropismo en el oviducto en las ponedoras comerciales. En los lotes infectados con estas cepas de MS se observa un mayor número de huevos rotos y rajados ( Sitio Avícola 2020 ). Efecto en la Producción de Huevo Efecto en la Calidad de la Cáscara del Huevo Si el lote está expuesto a MS durante el período de crecimiento, generalmente hay poco efecto en la producción de huevo ( Sitio Avícola 2020 ). Fuente: Freejpg ( s.f ) Fuente: Nutricionanimal (2022)

5. Reseña Histórica 1943  El término enfermedad respiratoria crónica se mencionó por primera vez en el título de un informe científico. La publicación presentaba una enfermedad en pollos con signos respiratorios y baja tasa de diseminación. Se estableció que la sinusitis infecciosa en pavos y la enfermedad respiratoria crónica en pollos eran causadas por un microorganismo parecido al agente de la pleuroneumonía (PPLO, Mycoplasma spp.) 1988 1950 Los episodios más importantes en la historia de las infecciones por Mycoplasma gallisepticum fueron el establecimiento de la función de los patógenos secundarios, como E. coli y algunos virus Dinev , (2015)

6. Especies Susceptibles Han demostrado su patogenicidad en pollos, pavos, faisanes, patos, gansos, perdices, pavos reales y codornices y han sido aislados de patos, gansos, loros y flamencos ( Gonzales, 2016 ). Fuente: Mundo Pecuario (2022) Fuente: El sitio avícola (2021) Fuente: Dinev (s.f) Fuente: Diagnóstico Veterinario ( s.f )

7. 6. Incidencia Y Distribución La incidencia de la infección por este microorganismo está favorecida por la intensificación de la producción actual. La existencia de áreas geográficas con poblaciones avícolas muy densas hace el control de M. gallisepticum muy difícil. Además, el auge de las granjas de edades múltiples trae como consecuencia que una vez que ocurra la infección por este microorganismo en las granjas ( Cayoja 2020). Fuente: Z oom.me (2021) Fuente: Magnet.xataka (2019)

8. 7. Etiología Los micoplasmas son su tamaño 0.3 a 0.8 μm y la carencia de pared celular que los clasifica como organismos procariotes ( Robit , 2007). Fuente: Fenavi (2016) Fuente: Fenavi (2016)

9. 8. Periodo de incubación Período de incubación Las aves de corral infectadas por medios experimentales desarrollan los síntomas después de 6 a 21 días. Las aves infectadas pueden ser asintomáticas durante varios días o meses hasta que sufren estrés ( Robit , 2007). Fuente: A vicolatoscana , (2019) Fuente: Olcese , (2009) Fuente: Mundo Pecuario (2022)

10. 9. Transmisión Vertical La transmisión vertical probablemente se inicia por el contacto del ovario con sacos aéreos infectados o es posterior a bacteriemia. Es posible que una situación similar se presente con los testículos de los machos (FENAVI, 2016). Horizontal En huevos fértiles contaminados con MG se presenta baja en la eclosión (FENAVI, 2016). Los pollitos de un día infectados van a la granja donde se inicia la transmisión horizontal (FENAVI, 2016). Fuente: Fenavi (2016) Fuente: Fenavi (2016)

11. 10. Síntomas En pollos de engorde y pollitas (4-8 semanas): Signos respiratorios más pronunciados que en adultos Estertores Chasqueo de pico Lagrimeo (abundantes exudados oculares), como consecuencia de conjuntivitis severa Disminución en el consumo de alimento. Crecimiento retardado. Mortalidad variable, puede ser alta si se tiene un mal manejo de las aves (FENAVI, 2016). Pollo de engorde Fuente: Fenavi (2016)

12. Estertores Chasqueo de pico Lagrimeo (abundantes exudados oculares), como consecuencia de conjuntivitis severa Disminución en el consumo de alimento. Caída en la producción de huevos, la producción permanece baja después del problema respiratorio. Baja mortalidad. MS causa anormalidad en la calidad externa del huevo, caracterizada por acumulación de grumos en la cáscara y cambio de coloración en el ápice (FENAVI, 2016). Ponedoras Fuente: Fenavi (2016) Fuente: Fenavi (2016)

13. 11. Lesiones Entre las lesiones causadas por MG se observa marcado engrosamiento de la membrana mucosa de los tejidos afectados, ya sea por o con infiltración de células mononucleares e hiperplasia de las glándulas mucosas ( Marroquin , 2005). Lesiones microscópicas Fuente: Fenavi (2016) Fuente: Fenavi (2016)

14. En las primeras etapas de sinovitis infecciosa, las aves presentan exudado gris a cremoso que afecta a las membranas sinoviales de las cubiertas tendinosas, articulaciones y bolsa del esternón. También se ha encontrado hepatoesplenomegalia. Los riñones presentan inflamación, además de una coloración pálida, en ocasiones de aspecto moteado ( Marroquin , 2005). Lesiones macroscópicas Fuente: Fenavi (2016) Fuente: Valencia (2017) Fuente: Valencia (2017)

15.   12. Diagnostico Bronquitis infecciosa, Enfermedad de Newcastle Gripe aviar. También se deben descartar las infecciones por Hemophilus paragallinarum , Pasteurella multocida y Mycoplasma synoviae (FENAVI, 2016). Diagnostico diferencial Fuente: Faneite (2020) Fuente: Soriano (2020)

16. Las infecciones por M. gallisepticum se pueden diagnosticar cultivando al agente en medios para micoplasma. Los análisis bioquímicos pueden resultar útiles en la identificación preliminar, pero la identificación definitiva se realiza por IFA (inmunofluorescencia indirecta), coloración de inmunoperoxidasa, prueba de inhibición del crecimiento, inhibición del metabolismo o por PCR (FENAVI, 2016). Análisis de Laboratorio Fuente: Fenavi (2016) Fuente: Fenavi (2016) Fuente: De la Torre (2021)

17. 13. Control Fuente : AVISCOLATA (2018) Fuente: A vicolatoscana , (2019) (FENAVI, 2016).

18. 14. Tratamiento Evitar el uso de antibióticos que actúen en la pared celular, los micoplasmas no poseen pared celular. Tilosina , Tiamulina y Tilmicosina (FENAVI, 2016). Las infecciones por micoplasma pueden ser tratadas con antibióticos para evitar infecciones secundarias y aliviar signos clínicos (FENAVI, 2016). Fuente: CC Laboratorios (2020 ) Fuente: Mundo Pecuario (2022)

19. 15. Bibliografía Gonzales, G. (2016). Ficha técnica - Micoplasmosis . Obtenido de: https://www.sag.gob.cl/sites/default/files/f_tecnica_micoplasmosis_v2-2016.pdf Sitio Avícola (2020). Micoplasma Sinoviae (MS). Obtenido de: https://www.elsitioavicola.com/articles/3000/micoplasma-sinoviae-ms/ Dinev, I. (2015). LA MICOPLASMOSIS AVIAR. Sitio Argentino de Producción Animal. Obtenido de: https://www.produccion-animal.com.ar/produccion_aves/enfermedades_aves/55-micoplasmosis.pdf CAYOJA TORDOYA, A. S. (2020). VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA DE MYCOPLASMOSIS AVIAR EN REPRODUCTORAS DE UN DÍA DE EDAD IMPORTADOS EN EL DEPARTAMENTO DE COCHABAMBA. Obtendo de: http://ddigital.umss.edu.bo:8080/jspui/bitstream/123456789/20857/1/CAYOJA%20TORDOYA%20ANGELICA%20SUSANA.pdf

20. Robit , A. (2007). Micoplasmosis aviar ( Mycoplasma gallisepticum ). Obtenido de: https://www.cfsph.iastate.edu/Factsheets/es/micoplasmosis_aviar.pdf FENAVI (2016). Cartilla de complejo respiratorio Aviar - Mycoplasma.Obtenido de: https://fenavi.org/wp-content/uploads/2019/04/COMPLEJO-RESPIRATORIO-AVIAR-MYCOPLASMA.pdf Marroquin , G. (2005). IMPLEMENTACIÓN DEL DIAGNÓSTICO DE Mycoplasma galiisepticum Y Mycoplasma synoviae MEDIANTE PCR-RFLP EN AVES DE PRODUCCIÓN. Obtenido de: http://riacti.uanl.mx/72/1/1080068127.PDF