NECROPULPECTOMIA Y MEDICACIÓN.ppt

Necropulpectomia, instrumentación y medicación

1. C.D. Edgar Ortiz Castillo.

2. ETIOLOGIA DE MUERTE PULPAR:
•Pulpitis irreversibles no tratadas adecuadamente
•Abrasión dental exagerada, actúa como traumatismo
crónico
•Factores iatrogénicos
•Traumatismos dentales

3. INSPECCIÓN:
La corona clínica puede presentar cambios de color y
tonalidad, haciendola más obscura.
La pieza puede presentar cierto grado de movilidad
La respuesta es leve cuando se aplica frio o corriente eléctrica
Al aplicar calor puede en algunos casos responder con dolor
Restauraciones mal ajustadas, caries secundarias
En la región periapical puede o no haber algún grado de
inflamación o alguna fístula
Dolor continuo severo, cuando la necrosis provoca algun
grado de agudizacón.

7. Lapulpadentalpuedemorircomoefectodeuntraumatismo,el
tejidonecróticoserácolonizadotardeotempranoporbacterias
anaerobias,aúncuandoelesmaltedelacoronaseencuentre
intacto;estefenómenohasidodemostradoampliamente,yaque
porpenetraciónbacterianaatravésdelostúbulosdentinarios,
laspulpasdentariasnecróticasdedientesseinfectan,aúnsin
provocaralgunasintomatologíaclínica.
Debemosconsideraratododientenecróticocomoinfectado,y
debesertratadocomotal.

8. FLORA DEL CONDUCTO RADICULAR
Encondicionesnormales,lapulpanoseveexpuestaa
agentesirritantes,alestarprotegidaporeltejidodurosano
quelorodea.
Cuandolacontaminaciónbacterianaesmasiva,lalesión
pulparesconsiderable,loquefavorecelainvasiónbacteriana
ylosmicroorganismossereproducenconmayorrapidez.
Lalesiónpulparesunrequisitoprevioparaelcrecimiento
microbianoenelsistemadeconductosradiculares.

9. LAS BACTERIAS YSUSPRODUCTOS
PRESENTES EN LOS CONDUCTOS
RADICULARES INFECTADOS, SON LOS
AGENTESETIOLÓGICOSDELASLESIONES
PERIAPICALES.
Sundqvist, 1976

10. LESIONES PERIAPICALES VISIBLES
RADIOGRAFICAMENTE
90% BACTERIAS ANAEROBIAS
10% BACTERIAS AEROBIAS
Sundqvist et al, 1989.

11. Especies bacterianas predominantes, aisladas de conductos
radiculares de dientes con lesiones periapicales.
Fusobacterium nucleatum 10 Prevotella oralis 4
Streptococcus species 8 Peptostreptococcus species 4
Lactobacillus (anaerobios ) 8 Actinomyces species 3
Bacteroides species 7 Arachnia propionica 2
Prevotella intermedia 5 Selenomonas sputigena 2
Eubacterium alactolyticum 5 Veillonella species 2
Eubacterium lentum/timidium 5 Porphyromonas gingivalis 1
Fusobacterium species 5
Sundqvist, 1989.

12. Bacterias alojadas en túbulos dentinarios que
sobreviven a la preparación químico-mecánica.
BACTERIAS COLONIZANDO EL TEJIDO
NECRÓTICO DEL CONDUCTO RADICULAR

13. Hongos colonizando las paredes del
conducto radicular.
Bacterias colonizando el sistema de conductos
radiculares, pasando a agredir a los tejidos
perirradiculares, induciendo alteraciones
patológicas en estos tejidos,

14. LAMOLÉCULADEENDOTOXINAPUEDEPENETRAR
ENLADENTNADECONDUCTOS RADICULARES
CORRECTAMENTE OBTURADOS, EN
APROXIMADAMENTE 30%DELOSCASOS.
Trope et al, 1995

15. TRATAMIENTO
APERTURA
DESGASTES COMPENSATORIOS (limastipoK,
Hedström,ampliadoresdeorificiomanuales,fresasGates-
Glidden).
DESBRIDAMIENTO DELCONDUCTO (instrumentos
endodónticos,irrigación,técnicascorona-ápice)
ODONTOMETRÍA
PREPARACIÓNBIOMECÁNICA (seefectúadeforma
completaenlamismasesión)
MEDICACIÓNINTRACONDUCTO

16. LAPREPARACIÓNBIOMECÁNICAYLAIRRIGACIÓN
CONNAOCLSONDEMÁXIMAIMPORTANCIAENLA
DISMINUCIÓN DELNÚMERO DEBACTERIASEN
CONDUCTOSRADICULARESINFECTADOS,PEROLOS
MEDICAMENTOS ANTIBACTERIANOS
INTRACONDUCTO NOPUEDENSERABANDONADOS .
SINELUSODEELLOS,LAMITADDELOS
CONDUCTOS RADICULARES TRATADOS
DESARROLLAN BACTERIASPARALASIGUIENTE
CITA.
Byström, A. 1986.

17. CVECH ( 1975 ) DEMOSTRÓ POR MEDIO DE
TÉCNICAS MICROBIOLÓGICAS EN SERES
HUMANOS, QUE LA INSTRUMENTACIÓN DE
CONDUCTOS RADICULARES INFECTADOS
AÚN CON EL EMPLEO DEL HIPOCLORITO DE
SODIO, NO ES EFICAZ PARA DEJAR
CONDUCTOS LIBRES DE BACTERIAS

18. EN CONDUCTOS RADICULARES INFECTADOS EL
PROCEDIMIENTO CLÍNICOMÁS IMPORTANTE
PARA LA REDUCCIÓN DE LAS BACTERIAS ES LA
METICULOSA PREPARACIÓN
BIOMECÁNICA AUXILIADA CON FRECUENTES
IRRIGACIONES CON HIPOCLORTO DE SODIO
ES NECESARIO EL SOPORTE DE UN
MEDICAMENTO ANTIBACTERIANO
INTRACONDUCTO

19. SMEAR LAYER
EL SMEAR LAYER QUE SE FORMA DURANTE LA
PREPARACIÓN DE CONDUCTOS RADICULARES
INFECTADOS ESTÁ COMPUESTO POR MATERIAL
INORGÁNICO, RESTOS DE CÉLULAS Y FIBRAS ASÍ
COMO DEBACTERIAS

20. Presencia de smear layer en el tercio
apical.
Túbulos dentinarios abiertos y llenos
con smear layer, tercio apical.

21. Túbulos dentinarios abiertos con
ausencia del smear layer-tercio apical
Tercio cervical y medio con
ausencia de smear layer.

22. MEDICACIÓN
INTRACONDUCTO
PORQUE
UTILIZAR?
QUE?
CUANDO?
CUANTO
TIEMPO ?
CÓMO SE
COLOCA ?
CÓMO
REMOVER?

23. CONDUCTO VACÍO ?
( SIN MEDICAMENTO, SOLO SELLADO)

24. EL ODONTÓLOGO EN CIERTAS SITUACIONES
CLÍNICAS DEBE DE COLOCAR ALGO Ó NO EN EL
INTERIOR DE LOS CONDUCTOS, ANTES DEL
CEMENTO TEMPORAL

25. REQUISITOS QUE DEBE REUNIR UN ANTISÉPTICO
INTRACONDUCTO
Actuar sobre todos los microorganismos presentes en el conducto
Rápida acción antiséptica
Capacidad de penetración en las ramificaciones del sistema de conductos
Ser efectivo en presencia de materia orgánica( sangre, pus, restos pulpres)
No dañar a los tejidos periapicales
No cambiar la coloración de la pieza dental
Ser químicamente estable
Económico y de fácil adquisición
Fácil de colocar y de remover.

26. MICROORGANISMOS QUE PUEDEN AISLARSE DE CONDUCTOS
RADICULARES INFECTADOS
BACTERIAS GRAMPOSITIVAS BACTERIAS GRAMNEGATIVAS
Bacterias aerobias y anaerobias Bacterias aerobias y anaerobias
Estreptococos Veillonella
S. milleri S. contellatusV. V. parvula
S. mutans S. intermedius Prevotella
S. sanguis Porphyromonas
S. faecalis Peptostreptococos P. buccae
P. anaerobius P. endotelialis
P. magnus P. gingivalis
P. micros P. intermedia
P. prevotii P.oralis
Actinomicetos
A. naeslundii A. viscosus, A. israelii, A. meyeri

27. ZONAS DE PROPAGACIÓN BACTERIANA EN DIENTES
DESPULPADOS E INFECTADOS, CON REACCIÓN PERIAPICAL
CRÓNICA.

28. EL HIDRÓXIDO DE CALCIO LLEVADO A LA PROFUNDIDAD DEL
CONDUCTO RADICULAR, PRESERVA LA VITALIDA DEL MUÑÓN
PULPARY ADELANTA EL PROCESO DE NEOFORMACIÓN
CEMENTARIA APICAL.

29. PARAMONOCLOROFENOL ALCANFORADO
Fue introducido a la terapeutica endodóntica por Walkoff en 1891.
Está compuesto por la adición del alcanfor líquido a los cristales del
paramonoclorofenol, su proporción aproximada es de 1 parte de
paramonoclorofenol por dos de alcanfor.
El P.M.C.A. estará indicado cuando el caso de necropulpectomía vaya a ser
obturado antes de 48 horas.
Stamps demostró que el P.M.C.A. penetra en de buena forma en el interior de
la dentina y en las distintas ramificaciones del sistema de conductos
radiculares.

30. Se hace una mezcla de P.M.C.A. con hidróxido de calcio puro
cuando la medicación deberá permanecer en el conducto por 2 a 3
semanas.

31. FORMOCRESOL
ES UN COMPUESTO VOLÁTIL, PERTENECE AL GRUPO DE LOS
ALDEHÍDOS, SE UTILIZA PRINCIPALMENTE COMO FIJADOR
TISULAR.
FÓRMULA:
19% FORMALDEHÍDO
35% CRESOL
46% AGUA Y GLICERINA

32. ES UN POTENTE GERMICIDA CONTRA TODO TIPO DE BACTERIAS. SU
USO ES CUESTIONABLE POR SER UN FUERTE IRRITANTE PERIAPICAL.
EN ODONTOPEDIATRÍA SE UTILIZA COMO MOMIFICADOR DEL TEJIDO
PULPAR.

33. HIDRÓXIDO DE CALCIO
Nygren en 1869 utilizaba el hidróxido de calcio para tratar dientes
con fístula, sin embargo Hermann en 1920 fue quien lo popularizó
en Odontología.
Actualmente el hidróxido de calcio es la medicación intraconducto
de elección, ya que reúne las suficientes características y
propiedades biológicas necesarias para la desinfección del conducto
radicular infectado previamente instrumentado.
Participa en la reparación periapical de las lesiones presentes en los
conductos de dientes despulpados.

34. PROPIEDADES DEL HIDRÓXIDO DE CALCIO
Es bactericida, debido a su Ph (12.4), por la liberación de iones OH
-
que
son altamente tóxicos para un gran número de bacterias
Tiene la capacidad de absorber el CO
2que pudiera encontrarse en el
conducto radicular.
Es antiexudativo, ya que si es colocado en polvo, podrá absorber el exudado
periapical, evitando su acumulación en los tejidos periapicales
Inhibe la reabsorción de tejidos duros y estimula la deposición de los
mismos
Estimula la cicatrización periapical, crea un ambiente desfavorable para las
bacterias, forma un ambiente propicio para la actividad celular.

35. Antes de colocar el hidróxido de calcio, es necesario remover la capa de
residuos ( smear layer ) de las paredes del conducto , mediante la colocación
por 4 a 5 minutos de una solución líquida de E.D.T.A., y realizar una última
irrigación con hipoclorito de sodio.

36. COMO COLOCARLO EN EL CONDUCTO?
GUTTA
CONDENSORS
LENTULO

38. El conducto debe de ser llenado con hidróxido de calcio,
limpiar la cámara pulpar de restos de la medicación y sellar
la cavidad con cemento temporal ( cavit, provisit, coltosol)

39. El tiempo mínimo para dejar el hidróxido de calcio es de 8 días, esto
es necesario para que primero neutralice la acidez del conducto
infectado y luego desinfectar el conducto radicular, sus
ramificaciones y los túbulos dentinarios.

40. COMO RETIRAR LA MEDICACIÓN ?
Se debe retirar el sellado coronario, la pasta se retira con
abundantes irrigaciones del conducto y la reinstrumentación del
mismo con una lima del mismo calibre que la maestra.
El conducto inunda con una solución de E.D.T.A. liquida, por
espacio de 4a 5 minutos, para que se eliminen de mejor manera los
residuos que pudiesen permanecer en las irregularidades de
conducto. Después de esto, el conducto radicular se encuentra listo
para su obturación