Presentacion Campylobacter jejuni_VF.pptx

Pre

1. FACULTAD DE QUÍMICO FARMACOBIOLOGÍA BACTERIOLOGÍA CLÍNICA I Presenta: Jessica Adzuira Perez Rangel Docente: Q.F.B. Jorge Octavio Ávila Ramírez Enteritis UNIVERSIDAD MICHOACANA DE SAN NICOLÁS DE HIDALGO 5º semestre Sección 07 Morelia, Michoacán a diciembre de 2024.

2. ENTERITIS La enteritis es una de las causas más comunes de infección bacteriana en el mundo, provoca inflamación del intestino grueso y/o delgado , con un periodo de incubación de 2-5 días. Se manifiesta con síntomas como diarrea acuosa, dolor abdominal, náuseas y/o vómitos, fiebre, pérdida de apetito , dolor muscular presentando deshidratación, aunque la mayoría de los casos son autolimitados, en algunos pacientes puede haber complicaciones, como el síndrome de Guillain-Barré, bacteremia, alguna enfermedad sist é mica o síndrome de color irritable. L a incidencia es mayor en época de verano , en rango de edad de 15-39 años , siendo los grupos de riesgo niños menores de 4 años , personas inmuno suprimidas y personas mayores de 65 años. En cuanto a tratamiento, depende de la causa, puede incluir hidratación oral o intravenosa, antiinflamatorios, antibióticos como eritromicina, dieta blanda y reposo .

3. RESUMEN E nteritis es una infección a nivel intestinal que provoca inflamación . P eriodo de incubación de 2-5 días . Síntomas fiebre, dolor abdominal y diarrea . C omplicaciones bacteremia, síndrome de Reiter o síndrome de Guillain-Barré. E nfermedad autolimitante en casos leves , solo se trata la deshidratación y dolores, en caso de persistir se trata con eritromicina preferentemente . Antes de tratamiento se tiene que identificar el agente causal.

4. Agente etiológico Dominio: Bacteria Reino: Monera Filo: Proteobacteria Clase: Epsilonproteobacteria Orden: Campylobacterales Familia: Campylobacteraceae Géneros: Campylobacter , Arcobacter, Sulfurospirillum Especie: jejuni Campylobacter jejuni 1991, se reconoció familia Campylobacteraceae por Vandame y De Ley. 2017

5. Propiedades Curvadas, forma de S, espirales. 0,2-5 µm de largo y 0.2-0.9 µm de ancho. G(-), b acilos aislados o d iplobacilos . Posee flagelos anf í tricos (bipolares) En general, no presentan capsula ni producen esporas. Microscópicas Flagelos anf í tricos Tinción Gram Microaerobias , la mayoría requiere baja concentración de O 2 y 10% de CO 2 T emperatura promedio de 42ºC .

6. Propiedades Macroscópicas Medio selectivo de Butzler Agar sangre de Skirrow Medio Campy -BAP Co lonias pequeñas, blancas, redondas con bordes definidos , planas , brillantes, húmedas y sin hemolisis. Co lonias medianas, blancas, redondas con bordes irregulares y difusos , convexas, brillantes, húmedas y sin hemolisis.

7. Propiedades. Estructura antigénica LPS y LOS Las adhesinas como CadF

8. Patogenia Ingesta E xcreci ó n

9. Anatomía Patológica Puede causar daño a: I ntestino H ígado P áncreas D año sistémico Dependiendo del nivel de la infección ,

10. Respuesta inmune

11. Manifestaciones clínicas Diarrea, heces s anguinolentas. Dolor abdominal intenso y deslocalizado Fiebre, en niños es m á s elevada Nauseas Dolores musculares y articulares Cefalea Letargo y fatig a Adormesimiento de extremidades Cuadro clínico

12. Diagnóstico clínico Historia clínica • Mujer de 23 años • Dolor abdominal intenso • Diarrea mucosanguinolenta • Malestar general • Debilidad muscular • Consumo de pollo sin cocción correcta 2 días previos a inicio de sintomatología Examen físico • Paciente deshidratada • Dolor abdominal en la región media y baja • Inflamación abdominal • Frecuencia cardíaca: 105/ min • Temperatura: 39º T • Presión arterial: 85/55 mmHg • Saturación de oxígeno: 90%

13. Diagrama de procesamiento de la muestra Diagnóstico de laboratorio

14. Medios de cultivo Medio selectivo de Butzler; medio selectivo y diferencial Composici ó n: -Base: medio de tioglicolato líquido -Aditivos: Agar (3%) Sangre de carnero (10%) indica presencia o ausencia de enzima hemol í tica Bacitracina (25 000 UI/L) inhibe G(+) Novobiocina (5mg/L) inhibe G(+) y algunas G(-) sensibles Colistina (10 000 UI/L) inhibe G(-) sensibles Cefalotina (15 mg/L) inhibe G(+) Actidiona (50 mg/L) inhibe hongos, como candida Diagnóstico de laboratorio S angre, permite diferenciar que no tiene enzimas hemol í ticas C olonias pequeñas, blancas, redondas con bordes lisos, convexas, brillantes, húmedas y sin hemolisis.

15. Medios de cultivo Medio de Blaseer (Campy-BAP); medio selectivo y diferencial Composici ó n: -Base: base de agar para brucelas -Aditivos: Sangre de camero (10%) indica presencia o ausencia de enzima hemol í tica. Vancomicina (10 mg/L) inhibe G(+) Trimetoprim (5 mg/L) inhibe G(+) y G(-) aer ó bicos Polimixina B (2 500 UI/L) inhibe G(-) sensibles Cefalotina (15 mg/L) inhibe G(+) Anfotericina B (2 mg/L) inhibe hongos Diagnóstico de laboratorio S angre, permite diferenciar que no tiene enzimas hemol í ticas C olonias medianas, blancas, redondas con bordes irregulares y difusos , convexas, brillantes, húmedas y sin hemolisis.

16. Medios de cultivo Agar sangre de Skirrow; medio enriquecido y selectivo Composici ó n: -Base: Base de agar sangre -Aditivos: Sangre de caballo lisada (7%) Vancomicina (10 mg/L) inhibe G(+) Polimixina B (2 500 UI/L) inhibe G(-) sensibles Trimetoprim (5 mg/L) inhibe G(+) y G(-) aer ó bicos Diagnóstico de laboratorio Con los antibi ó ticos presentes solo permite crecimiento de Campylobacter jejuni lo que elimina el desarrollo de microbiota. Co lonias pequeñas, blancas, redondas con bordes definidos , planas , brillantes, húmedas y sin hemolisis.

17. Diagnóstico de laboratorio Pruebas bioquímicas diferenciales Pruebas bioquímicas

18. Pruebas serológicas E nsayo de microplaca ProSpect Campylobacter Presencia de ant í geno correspondiente a Campylobacter jejuni El ensayo de microplaca ProSpect Campylobacter es un inmunoensayo enzim á tico de microplaca IN VITRO para la detecci ó n cualitativa del ant í geno espec í fico de Campylobacter en muestras fecales , de pacientes con sintomatolog í a

19. Pruebas de biología molecular PCR , r eacción en cadena de la polimerasa. En color blanco son los genes establecidos para Campylobacter jejuni y en azul los aislados de muestra. Son comparados con gen ST-22 y ST-6461 se nota gran parecido por lo que indica ser el mismo

20. I nfecciones zoonóticas R eservorio : aves de corral, cerdos, toros, perros, gatos, conejos. P rincipalmente en meses de verano y otoño . Grupos de riesgo : Epidemiología

21. Epidemiología

22. Prevención y control Se previene la exposición con la cocción completa de carnes, consumir alimentos lácteos pasteurizados y evitar la c ontaminación de los alimentos cocidos con los crudos. No se puede eliminar el estado de portador de los reservorios animales, ya que no se ha podido d esarrollar una vacuna, por lo que persiste el riesgo de infecciones a partir de ellos.

23. Tratamiento Antibiograma Método de difusión en disco por la técnica Kirby-Bauer . Los antibi ó ticos para tratar la infecci ó n son eritromicina, azitromicina y gentamicina. Inhiben la sintesis de prote í na uniendose a alguna sub-unidad del ribosoma.

24. Conclusiones La enteritis provoca inflamación del intestino delgado o grueso, antes de síntomas tiene un periodo de incubación de 2-5 días los pacientes pueden tener fiebre, dolor abdominal y diarrea y la duración de la infección es de varios días a mas de una semana. Para tratar los casos graves o prolongados se requiere de eritromicina o azitromicina, por lo general no se prescriben antibióticos, pero se trata la pérdida de electrolitos, fiebre y dolores musculares. Al no existir una vacuna aun, es importante prevenir brotes evitando consumir leche sin pasteurizar, así como estar en contacto con animales o agua posiblemente contaminados, y llevar los alimentos de ave de corral a una buena cocción durante su preparación , evitando contaminacion cruzada con alimentos crudos.

25. Referencias Bibliográficas C handran , S. (2024). Prokaryotic and eukaryotic dual- expression plasmid-mediated delivery of Campylobacter jejuni  antigens by live-attenuated  Salmonella: A strategy for concurrent Th1 and Th2 immune activation and protection in chickens . Elsevier . Volume 153. https://doi.org/10.1016/j.dci.2024.105134 C hintoan -Uta, C. et al. (2015) Superoxide dismutase SodB is a protective antigen against  Campylobacter jejuni  colonisation in chickens . Elsevier . Volume 33. Pages 6206-6211. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2015.09.100 C ollado, L. (2020). Diagnóstico microbiológico y vigilancia epidemiológica de la campilobacteriosis en Chile: Situación actual y desafíos futuros. Scielo .  ISSN 0716-1018 Fischer, G. et al (2024). Campylobacter infection . National Library of Medicine. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK537033/ Garcia , R. y Molina J. (2020). Bacteriología: Campylobacter jejuni. Departamento de microbiologia y parasitología. https://microypara.facmed.unam.mx/index.php/campylobacter-jejuni/

26. Geo. F. Brooks, K. C. (2016). Microbiologia Medica Jawetz , Melnick y Alberg . España: Mc Graw Hill, Patrick International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology . (2017). Minimal standards for describing new species belonging to the families Campylobacteraceae and Helicobacteraceae : Campylobacter, Arcobacter , Helicobacter and Wolinella spp . DOI 10.1099/ijsem.0.002255 K oneman , S. D. (2017) Diagnostico Microbiologico . España: Texto y atlas Malet-Villemagne , J. y Vidic , J. (2024). Extracellular vesicles in the pathogenesis of Campylobacter jejuni. Elsevier . https://doi.org/10.1016/j.micinf.2024.105377 Loshaj-Shala , A. et al. (2018). Immunoproteomic identification of antigenic candidate  Campylobacter jejuni and human peripheral nerve proteins involved in Guillain-Barré syndrome . Esevier . Volume 317. Pages 77-83. https://doi.org/10.1016/j.jneuroim.2018.01.006 Murray , K.S (2017). Microbiologia Medica. 7ma. Edicion . España: Elsevier Referencias Bibliográficas