Tinción de Sternheimer-Malbin

Urianalisis

1. 1
Imparte:
QFB. Myrna Adriana Hernández
Anica
Realizado por:
Bustos Galindo Perla Dalia
DIPLOMADO URIANALISIS
2018
“Implementación de la tinción
Sternheimer- Malbin”

2. INDICE
Resumen 2
Introducción 3
Antecedentes 3
Generalidades 4
Sedimento urinario 6
Tinciones 8
Justificación 9
Objetivo 10
Materiales y método 11
Valores de referencia 15
Resultados 16
Discusión 22
Conclusión 23
Bibliografía 24
2

3. RESUMEN
Los términos “uroanálisis”, “urianálisis”, “análisis de la orina” “citoquímico de orina”, “parcial
de orina” describen un perfil o grupo de pruebas tamiz con capacidad para detectar una
enfermedad renal, del tracto urinario o sistémica. Desde el punto de vista de los
procedimientos médicos, la orina se ha descrito como una biopsia líquida, obtenida de forma
indolora, y para muchos, la mejor herramienta de diagnóstico no invasiva de las que dispone
el médico (1).
Debido a la importancia del examen general de orina, se han implementado desde equipos
automatizados para el análisis químico hasta tinciones para el análisis microscópico.
Dentro de estas últimas se encuentra uno de los más utilizados desde su publicación en
1951 por Sternheimer y Malbin (2) donde al teñir el sedimento urinario se notan algunos
leucocitos que se colorean de un azul pálido, en contraste con otros que lo hacen
intensamente; los primeros presentan cambios en su morfología y tamaño, vacuolización,
proyección de fragmentos de citoplasma y gránulos con movimiento browniano. Actúan como
indicadores biológicos de pielonefritis; su hallazgo se ha relacionado con datos obtenidos por
biopsias renales (3), y se les conocieron por varios nombres: cédulas pálidas,
resplandecientes (4), centellantes, titilantes (5), de gránulos móviles y "glitter cells" (6).
Este trabajo pretende mostrar la importancia que hasta el momento conlleva aplicar una
técnica de tinción como plan de mejora, impactando directamente en los resultados emitidos
al médico. Detallando con más claridad las estructuras observadas en sedimento urinario,
que anteriormente se omitía y que son de gran relevancia en el apoyo diagnostico.
3

4. INTRODUCCION
Antecedentes
La inspección de la orina para propósitos de diagnóstico ha sido practicada por siglos y
probablemente representa el procedimiento más antiguo de laboratorio usado hoy en día en
la medicina moderna. Hipócrates notó que el volumen de orina debería ser proporcional a la
cantidad de líquido ingerido y es un poco más espeso en consistencia, diferenció cambios en
la orina debido a enfermedades del riñón (7).
Giles de Corbeil en el siglo trece usó un sistema elaborado de urianálisis que combinaba 20
colores, tres consistencias y cuatro zonas para predecir la enfermedad (8).
Johannes Actuarius de Constantinopla, publicó su mejor trabajo “De Urinis” en el siglo trece,
en él relaciona el color de la orina a los humores, él fue el primero en describir
hemoglobinuria paroxística. El cirujano italiano William de Saliceto notó la coincidencia de
riñones contraídos y el goteo, pero no fue hasta cientos de años después que sus
observaciones fueron confirmadas (9)
Siglo XVII. Con la invención del microscopio el uroanálisis adquirió gran importancia al
analizar el centrifugado, lo que dio origen al estudio del sedimento, estudio ampliado por
Thomas Addis. Para fines del siglo XIX ya existieron tratados completos sobre el examen
macroscópico y microscópico de la orina.

1797. Carl Friedrich Gärtner propuso estudiar la orina en la cabecera del paciente y William
Cruikshank describió por vez primera la propiedad de coagulación (presencia de proteínas)
de la orina al aplicar calor en algunas muestras.
1827. Richard Bright, en “Reports of Medical Cases”, al describir la “naturaleza albuminosa
de la orina” inició la química cualitativa aplicada a la orina.
1850. Jules Maumené es el padre de las tiras reactivas si se tiene en cuenta que para esa
época impregnó una tira de lana de oveja merino con “protocloruro de estaño” (cloruro de
estaño) la cual al aplicar una gota de orina y calentándola con una vela, la tira se tornaba
negra inmediatamente si la orina contenía azúcar.
1883. George Oliver comercializó sus “papeles de prueba de orina”, papel de filtro
impregnado de los reactivos necesarios para la facilitar la tarea del médico frente al paciente.
1904. La empresa Helfenberg AG inicia la comercialización de papeles reactivos y entre
ellos una prueba para detectar la presencia de sangre en la orina mediante un método de
química húmeda que utilizaba bencidina, mucho antes que una prueba similar de bencidina
sobre papel apareciera en el mercado.
4

5. 1920. Fritz Feigl publica su técnica de “análisis inmediato” dando origen a lo que años más
tarde serían las tirillas reactivas de hoy
1950. La compañía Boehringer Mannheim fabricó las tirillas reactivas por vez primera a nivel
industrial.
1951. Se publica nueva tecina de tinción descrita por Sternheimer y Malbin
1964. Aparecen la primeras tirillas de Combur (Roche Diagnostics). (1)
Generalidades
La orina se forma en las nefronas renales, compuestas de los glomérulos y de los tubos
uriníferos. Alrededor del 90 por 100 de la sangre arterial que llega a los riñones pasa por los
capilares glomerulares en donde se filtra el agua y diversas sustancias solubles contenidas
en el plasma a través de las membranas semipermeables de los glomérulos. En un adulto
normal se producen de 125 a 150 ml de filtrado glomerular por minuto. Este filtrado
glomerular sufre alteraciones al pasar a través de los túbulos renales, antes de alcanzar la
pelvis renal ya en forma de orina. Durante este proceso, alrededor del 98-99% del agua es
reabsorbida.
Con la finalidad de ser conservadas, ciertas sustancias como glucosa, cloro, sodio, calcio y
magnesio; que son sustancias de alto umbral renal. Las sustancias de bajo umbral renal
como urea, acido úrico, fosfatos y sulfatos endógenos, son reabsorbidos pasivamente.
Por lo tanto, la orina reflejará mediante su composición, la capacidad del riñón para retener
o reabsorber aquellas sustancias necesarias para el metabolismo básico y homeostasis. Los
solutos presentes en la orina dependerán principalmente de la dieta y también de estados
fisiológicos tales como digestión, sueño, posturas, edad, sexo, etc.
La creatinina es una sustancia sin umbral renal, ya que normalmente no es reabsorbida, si
no concentrada en mayor grado que cualquier otro de los constituyentes de la orina.
Por consiguiente, la formación de la orina depende fundamentalmente:
1.De la filtración glomerular
2.De la reabsorción tubular activa y pasiva de la sustancias que se encuentran en el
filtrado glomerular
3.De la excreción tubular de algunas sustancias ( en menor grado) (10)
5

6. 6
Fig. 1 Estructura de la nefrona

7. Sedimento urinario
El sedimento normal se halla prácticamente vacío, aunque en ocasiones pueden observarse
células de la vía urinaria e incluso de los genitales externos, así como eritrocitos o leucocitos
aislados, cristales, sales amorfas o filamentos de moco, resultando el resto de los elementos
de probable origen patológico. Los componentes patológicos que se observan más a
menudo son bastante inespecíficos y se evidencian en diversas enfermedades de la vía
urinaria (11,12)
Eritrocitos. Los eritrocitos se eliminan en forma muy reducida en la orina, incluso en
personas normales, con aumento 400x, se puede observar aproximadamente 0 a 2 hematíes
por campo. Éstos se identifican al examen microscópico como discos redondos de color
débilmente amarillo rojizo, con doble contorno. En las orinas hipotónicas se hinchan y en las
hipertónicas se arrugan. La morfología de los hematíes puede revelar el origen glomerular o
post glomerular de la hematuria (13).
Elementos que apoyan la sospecha de una hematuria de origen glomerular son la presencia
simultánea de cilindros eritrocitarios, granulosos, hialinos (14).
Leucocitos. Cuando se habla de leucocitos casi siempre se habla de granulocitos, y estos
indican la presencia de procesos inflamatorios del riñón y la vía urinaria. Al examinar un
sedimento urinario de una persona sana, pueden detectarse hasta 5 leucocitos por campo de
400x, sin que esto tenga significado patológico. Son células de tamaño mayor a los hematíes
y menor a las células epiteliales, con presencia de núcleo segmentado y granulaciones. En la
mujer debe tenerse en cuenta que los leucocitos hallados pueden ser de origen vaginal,
sobre todo si se acompañan de una gran cantidad de células de epitelio plano, por lo que el
estudio de la orina de chorro medio puede ser de gran valor para aclarar esta cuestión. Si
además de la leucocituria se evidenciaran cilindros leucocitarios procedentes de los túbulos,
el origen sería renal y el diagnóstico pielonefritis (14,15).
Epitelio. Los elementos epiteliales son frecuentes en el sedimento urinario y su valor
diagnóstico muy reducido. Existen diversos tipos de epitelio:
a)Epitelio plano: Procede de los genitales externos o de la porción inferior de la uretra.
Se trata de grandes células de aspecto irregular con un núcleo pequeño y redondo,
pudiendo observarse en forma frecuente un repliegue parcial en el borde celular (16).
b)Epitelio de transición: Tiene su origen desde la pelvis renal, uréter y vejiga, hasta la
uretra. Su presencia acompañada de leucocituria puede indicar una inflamación de la
vía urinaria descendente. En caso de apreciar anomalías nucleares deberá
descartarse un proceso maligno. Estas células son más pequeñas que las del epitelio
plano, son redondeadas con "cola" y su núcleo es más grande y redondo (16).
c) Epitelio tubular o renal: Son células algo mayores que los leucocitos y presentan
granulaciones. Su núcleo, de difícil visualización es grande y redondo. Las células de
epitelio tubular que contienen gotas de grasa muy refringentes en el protoplasma, se
conocen como células granulosas o cuerpos ovales grasos y su presencia sugiere la
existencia de un Síndrome Nefrótico (16).
7

8. Cilindros. La presencia de cilindros indica casi siempre la presencia de una enfermedad
renal, aunque la evidencia de alguno de ellos (hialinos y granulosos) pueden encontrarse en
personas sanas tras grandes esfuerzos físicos (17-18). Existen diversos tipos de cilindros:
a)Cilindros hialinos: Está compuestos por una proteína de alto peso molecular
(mucoproteina de Tamm-Horsfall) que se produce y elimina en cantidades muy
pequeñas en condiciones normales. Estos cilindros son homogéneos, incoloros,
transparentes y poco refringetes, por lo que son fáciles de omitir. Pueden aparecer en
forma aislada en personas sanas o tras la administración de diuréticos potentes como
la furosemida, sin embargo su número aumenta drásticamente durante el curso de un
síndrome nefrótico. No es raro detectar cilindros hialinos con inclusiones celulares
(eritrocitos, leucocitos, epitelio tubular), lo que determina la presencia de enfermedad
del parénquima renal (19-20).
b)Cilindros granulosos: Ocasionalmente pueden aparecer en personas sanas, aunque
su presencia se relaciona con enfermedades agudas y crónicas del riñón. Suelen ser
más grandes que los hialinos y presentar inclusiones granulares. No es raro observar
una mezcla de cilindros hialinos y granulosos (19-20).
c)Cilindro céreos: Suelen ser más anchos que los hialinos, muestran un refringencia
mucho mayor y no son fáciles de omitir. Presenta muescas o hendiduras finas en sus
bordes, que dirigen perpendicularmente al eje longitudinal del cilindro. Su presencia
indica siempre una enfermedad renal crónica grave en un paciente con insuficiencia
renal crónica avanzada, pero en ocasiones puede observarse en la fase de
recuperación de la diuresis luego de un periodo de anuria (19-20).
d)Cilindros epiteliales: Están compuestos de epitelio tubular descamado. Su presencia
se aprecia especialmente en la fase de recuperación de la diuresis luego de una falla
renal aguda por necrosis tubular isquémica o tóxica. Son poco frecuente (19-20).
e)Cilindros eritrocitarios: Se componen de eritrocitos hinchados que se adhieren a una
sustancia fundamental hialina. Indican siempre el origen renal de la hematuria y por
consiguiente se trata de un hallazgo muy valioso. Aparecen fundamentalmente en la
Glomerulonefritis aguda y crónica y también en la Nefropatía lúpica, éndocarditis
bacteriana asociada a Glomerulonefritis (19-20).
f)Cilindro leucocitario: Se producen cuando ocurre una exudación intensa de leucocitos
y al mismo tiempo se eliminan proteínas por el túbulo. Su presencia tiene fundamental
importancia ya que demuestra que la inflamación es de origen renal, casi siempre, a
causa de una pielonefritis (19-20).
Cristales. Los cristales pueden adoptar múltiples formas que dependen del compuesto
químico y del pH del medio. En comparación con otros elementos de la orina, los cristales
sólo poseen valor diagnóstica en muy pocos casos (21,22).
a)Uratos: Se encuentran en forma amorfa en orinas ácidas o conformando un cilindro, lo
que puede llevar a confusión. Cuando se eliminan en grandes cantidades, se
reconocen macroscópicamente como un precipitado rojo-pardo (polvo de ladrillo)
(21,22).
b)Urato diamónico: Aparece en orinas ligeramente alcalinas como pequeñas esferas de
color amarillo pardo. No tiene ningún significado diagnóstico especial (21,22).
8

9. c)Ácido úrico: En la orina ácida pueden adoptar múltiples forma. Son frecuentes en
orinas concentradas, como ocurre en la fiebre, en la gota y en la lisis tumoral (33,34).
d)Oxalato de calcio: Es incoloro y muy birrefringente. Es característica su forma en
sobre de carta. Se producen con gran frecuencia luego de la ingesta de alimentos
ricos en oxalato (21,22).
e)Cistina: Se detectan en orinas ácidas como cuadros hexagonales incoloros. Se
observan en la cistinuría, trastorno congénito de la reabsorción tubular de cistina
(21,22).
Tinciones
Los exámenes microscópicos de preparados coloreados son importantes para identificar
microorganismos y distinguir los tipos de células uroteliales.
1)Tinción de Sternheimer-Malbin, esta solución colorante que se uso primero para
diagnosticar pielonefritis, ha resultado ser muy útil para distinguir diversos tipos de
células uroteliales. Existe una solución comercial de constituyentes similares a los de
la solución de Sternheimer-Malbin siendo esta muy práctica ya que se mezclan bien
bajo un cubreobjetos una gota de sedimento urinario y una gota de solución
depositada lado a lado. Siendo esta tinción la de mayor empleo sus constituyentes
son cristal violeta y safranina O, la observación microscópica se puede hacer pocos
minutos después ya que la tinción se acentúa en forma gradual, los glóbulos rojos,
glóbulos blancos y células epiteliales adquieren una coloración difusa por
desvitalización, proporcionando una delineación más definida de la estructura y
contrastando los colores del núcleo y citoplasma (23).
2)Tinción de peroxidasa de Kaye, modificada por Lampen: permite reconocer cilindros
leucocitarios (23).
3)Tinción de la grasa con Sudán III, identifica la grasa contenida en células o cilindros.
4)Tinción de Eosina, tiñe eritrocitos de color rosa. Doble tinción con eosina y azul de
metileno: otorga color rojizo a los hematíes y cilindros eritrocitarios, diferenciándolo del
color azul que toman otros elementos (23).
5)Tinción eosinofílica de Hansel, para la detección de eosinofiluria, hallazgo
característico de la nefritis intersticial aguda inducida por medicamentos (23).
6)Tinción con yodo, la reacción del yodo sirve para identificar células ricas en glicógeno
y contaminantes vegetales; el contenido de glicógeno de las células uroteliales reflejan
alteraciones citohormonales en las mujeres que están en edad de procrear (23).
7)Tinción de Perls, cuando existe una pérdida de sangre por la orina esta puede ser
debida a una hematuria o a una hemoglobinuria (23).
9

10. JUSTIFICACION
Las innovaciones en el Laboratorio clínico han sido amplias y la mayoría de las áreas han
sido estandarizadas, sin embargo el área de urianalisis ha experimentado muy poco, o casi
ningún cambio.

Hasta este momento se ha subestimado el examen general de orina, descartando todos
aquellos datos relevantes para el diagnostico del paciente. Por otro lado y por si fuera poco,
en laboratorio clínico se observan reportes con falta de información, como el tipo celular,
tipos de eritrocitos e incluso la mala identificación de alguna estructura como cilindros,
cristales, artefactos, etc.
Todo lo anterior lleva a minimizar la importancia de un estudio aparentemente sencillo, que
nos puede brindar información valiosa, de una muestra de obtención rápida y sin producir
daño al paciente, con resultados casi de manera inmediata.
Todo lo anterior nos ha exhortado a implementar la utilización del colorante Sternheimer-
Malbin con la finalidad de reconocer de una manera más fácil estructuras que anteriormente
se omitían, llevando a emitir un resultado más completo y de más utilidad para el médico
tratante.
OBJETIVO
10

11. General
Implementar la tinción de sedimento urinario utilizando el colorante Sternheimer-Malbin, con
el fin de mejorar el reporte emitido al médico tratante.
Específicos
1.Implementar la tinción de sedimentos urinarios y reconocimiento de estructuras como
tipos de células, cilindros, cristales, etc.
2.Estandarizar la cantidad de muestra observada microscópicamente, utilizando celdas
de lectura rápida de precisión de Quick- Read
R
3.Revisión de valores de referencia actuales y modificar en caso necesario en el
sistema interno de laboratorio
4.Modificación del tipo de rubros a reportar, en el sistema interno del laboratorio clínico
para el estudio “examen general de orina “
Materiales y método
11

12. 1.Centrifuga de mesa, con la capacidad de alcanzar 1500 rpm y un tiempo de 5 minutos
2.Laminas múltiples Quick-Read
R
, cada una con diez cámaras individuales marcadas
para el montaje de diez muestras, cada una contiene 18 círculos, los cuales estas pre
medidos y permiten albergar volúmenes específicos del sedimento.
3.Tubos para centrifuga cónicos de hasta 12 ml de capacidad
4.Pipetas desechables que permiten retener 1 ml de muestra después de la decantación
5.Colorante de

Sternheimer-Malbin
6.Microscopio NIKON Eclipse E200
7.Equipo Aution Eleven-4020, para realizar el análisis químico
8.Tiras reactivas AUTION STICKS 10EA
Metodología
1.Obtención de la muestra

Se analizan muestras sin discriminar edad, sexo y el área de procedencia del hospital (UTIA,
urgencias, hospitalización y pacientes de consulta externa), para estos últimos se dan las
instrucciones para la recolección de la muestra a chorro medio y preferentemente la primera
de la mañana. Se omitieron las indicaciones en aquellos casos donde el médico solicitaba el
estudio de manera urgente.
Indicaciones para recolección de muestras:
·Paciente masculino:
Lave sus manos con agua y jabon antes de obtener la muestra
Retraiga la piel del pene y lave la salida de la uretra con una toalla mojada
Limpie y seque con una toalla seca
Deje salir un primer chorro a la taza del baño
Deposite la siguiente porción del frasco
Elimine el resto en la taza del baño
Tape el frasco evitando tocar el interior y entregarlo en el laboratorio lo antes
posible
·Paciente femenino
Lave sus manos con agua y jabón antes de obtener la muestra
Separe sus labios
Limpie sus genitales externos, de adelante hacia atrás, con tres toallas
húmedas
Seque con una toalla seca
Deje salir un primer chorro a la taza del baño
Deposite la siguiente porción del frasco
Elimine el resto en la taza del baño
12

13. Tape el frasco evitando tocar el interior y entregarlo en el laboratorio lo antes
posible
Rechazo de muestras:
Muestras obtenidas después de una ingesta exagerada de líquidos ( preparación para
estudio de ultrasonografia por ejemplo)
Muestras con más de 1 hora de haber sido emitidas, conservadas o transportadas a
temperatura ambiente
En caso de incontinencia se recomienda la segunda orina de la mañana con una
ingesta de 200 ml de agua desde la noche anterior
Muestras sin etiquetar o mal etiquetadas ( etiquetar en el frasco, NO en la tapa)
Muestras visiblemente contaminadas, mal tapadas o sin tapa
Muestras en las que se observen abundantes núcleos de célula epitelial escamosa “
desnudos” o desprovistos de citoplasma, que acompañados por bacterias de
morfología bacilar, demuestran una contaminación de origen vaginal
2.Vaciado de la muestra y análisis químico/microscópico
i.recolección de la muestra debidamente etiquetada
ii.mezclar perfectamente el frasco
iii.se realiza el vaciado en tubos de fondo cónico, con una capacidad de hasta 12 ml.
llenando solo hasta el aforo de 10 ml para todas las muestras. En este momento se
realiza la observación del color y aspecto
iv.Sumergir una tira de prueba AUTION STICK 10EA en el tubo durante 2 segundos
v.Eliminar el exceso de orina en la tira de prueba con papel
vi.Colocar la tira de prueba en la bandeja de tiras de prueba del equipo
vii.El brazo portador moverá la tira de prueba a los puertos de succión
viii.Al terminar la medición el equipo imprime un reporte de resultados además de
interfazar el resultado al sistema interno de laboratorio
ix.Los elementos medidos son: glucosa, proteínas, bilirrubinas, urobilinogeno, pH,
gravedad específica, sangre, leucocitos, nitritos y cetonas.
x.Después de sumergir la tira reactiva para el análisis químico, centrifugar la muestra
5 minutos a 1500 rpm
xi.Decantar el sobrenadante
xii.Agitar el tubo hasta re suspender el botón formado por la centrifugación
xiii.Agregar 2 gotas de colorante Sternheimer-Malbin marca Hycel
xiv.Re suspender con micropipeta
xv.Transferir la muestra por capilaridad a la laminilla múltiple
xvi.Realizar la lectura microscópica empleando el objetivo de 10X para cilindros y 40X
para el resto de elementos formes. Un círculo será visto en un campo completo.
Determinar el promedio de elementos por círculo.
xvii.Para establecer el número promedio, contar los elementos en uno o más círculos y
dividir el total contado por el número de círculos observados. Los mejores
resultados son los obtenidos por el número del conteo total en todos los 18
círculos.
13

14. xviii.Realizar el reporte en el sistema infolab Web
Por ejemplo:
Si se tomó un volumen de orina de 10 mL, del sedimento 1 mL y se realizó un
recuento en 9 círculos, el número de elementos es 27. (24)
Características de las laminillas múltiples:
COLORACIÓN DE STERNHEIMER – MALBIN
Preparación del Reactivo:
Solución 1:
Cristal violeta 3 gr.
Alcohol etílico (95%) 20 mL
Oxalato amónico 0,8 gr.
Agua destilada 80 mL
Solución 2:
Safranina O 1 gr.
Alcohol etílico (95%) 40 mL
Oxalato amónico 0,8 gr.
Agua destilada 400 mL
Se mezclan tres partes de la Solución 1 más 97 partes de la solución 2, filtrándose esta
mezcla.
14

15. La mezcla debe mantenerse clara filtrándose cada dos semanas y desecharse después de
tres meses. Por separado ambas soluciones pueden mantenerse a temperatura ambiente.
En las muestras muy alcalinas, el colorante precipita.
Este colorante nos facilita la identificación de estructuras como:
Eritrocitos: se tiñen de un color rojo intenso, además de ayudar a identificar algún
daño en la membrana de los mismos
Leucocitos: si existen leucocitos provenientes de una infección renal, se observan de
un color rosa pálido, mientras que aquellos provenientes de una infección localizada
en las vías bajas se tiñen de un color rojo intenso
Leucocitos vitales: son aquellos que tienen un ligero engrosamiento de glóbulos de
color azul pálido y movimientos vibrantes de los gránulos del citoplasma celular, por
ello se denominan celular destellantes de Schilling
Cilindros: en la diferenciación de cilindros granulosos y celulares, ya que los cilindros
granulosos compuestos por células muertas se tornarán de un color grisáceo,
mientras que los cilindros celulares, compuestos de células vivas obtendrán un color
azul
Como indicador de posible pielonefritis: se observan células pálidas resplandecientes,
de gránulos móviles.
Valores de referencia
15

16. Químico
Analito Valor de referencia
pH 5-8
Densidad 1.015-1.025 g/dL
Leucocitos NEGATIVO
Nitritos NEGATIVO
Proteínas NEGATIVO
Glucosa NEGATIVO
Cetona NEGATIVO
Urobilinogeno NORMAL (0.2-1.0 mg/dL)
Bilirrubinas NEGATIVO
Hemoglobina NEGATIVO
Microscópico
Estructura Valor de referencia
Eritrocitos 0-2 mL
Células Epitelio plano. HOMBRES: ESCASO
MUJERES: VARIABLE CICLICO
UROTELIO: AUSENTE
EPITELIO RENAL: AUSENTE
Leucocitos 0-5 mL
Cilindros NO SE OBSERVAN
Cristales NO SE OBSERVAN
Bacterias ESCASAS/ CAMPO
Resultados:
Tabla 1. Se analizaron un total de 40 muestras, mostrando los siguientes resultados en tira reactiva
16

17. Tabla 2. Resultado en lectura del sedimento urinario:
17
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1 URG AMA LT 6.0 1.015 NEG NEG NEG NEG NEG NOR NEG 0.2
2 URG AMA TRA 5.5 1.010 NEG NEG NEG NEG NEG NOR NEG NEG
3 URG AMA TRA 5.5 1.010 NEG NEG NEG NEG NEG NOR NEG NEG
4 EXT AMA TRA 6.0 1.010 NEG NEG NEG NEG NEG NOR NEG NEG
5 HOS AMA LT 6.5 1.010 NEG NEG 20 NEG NEG NOR NEG 1.0
6 URG AMA TUR 7.0 1.030 25 NEG 30 100 NEG NOR NEG NEG
7 URG ROJO LT 6.5 1.015 250 NEG 30 NEG 10 NOR NEG 0.2
8 HOS AMA TRA 7.5 1.015 NEG NEG 10 NEG 20 NOR NEG NEG
9 URG AMA LT 5.5 1.015 NEG NEG 20 NEG NEG NOR NEG NEG
10 URG AMA TRA 6.0 1.005 NEG NEG NEG NEG NEG NOR NEG NEG
11 UTIA AMA TRA 7.0 1.010 25 NEG NEG NEG 10 NOR NEG NEG
12 HOS AMA LT 7.5 1.020 NEG NEG 30 NEG NEG NOR NEG NEG
13 URG AMA AMA 7.0 1.010 NEG NEG NEG NEG 10 NOR NEG NEG
14 URG AMA TURB 5.5 1.015 75 NEG 30 NEG NEG NOR NEG 0.06
15 URG AMA LT 8.0 1.020 NEG NEG NEG NEG NEG NOR NEG NEG
16 URG AMA LT 7.0 1.010 75 NEG NEG NEG NEG NOR NEG NEG
17 EXT AMA TRA 7.0 1.010 NEG NEG NEG NEG NEG NOR NEG NEG
18 URG AMA TURB 5.5 1.015 75 POS NEG NEG NEG NOR NEG 0.2
19 URG AMA LT 6.0 1.030 NEG NEG 50 NEG NEG NOR NEG 1.0
20 URG AMA TRA 6.5 1.015 NEG NEG NEG NEG NEG NOR NEG NEG
21 UTIA AMA LT 5.5 1.030 NEG NEG 20 NEG 40 NOR NEG NEG
22 HOS AMA TRA 7.0 1.030 NEG NEG 300 NEG NEG NOR NEG 1.0
23 URG AMA TRA 6.5 1.020 NEG NEG NEG NEG NEG NOR NEG NEG
24 URG AMA LT 5.0 1.020 NEG NEG 20 70 20 NOR NEG NEG
25 URG AMA TUR 6.5 1.025 250 NEG 10 NEG NEG NOR NEG NEG
26 EXT AMA TRA 7.0 1.010 NEG NEG 200 50 NEG NOR NEG NEG
27 EXT AMA TRA 5.0 1.030 NEG NEG NEG NEG NEG NOR NEG 0.06
28 EXT AMA LT 5.5 1.030 NEG NEG NEG NEG NEG NOR NEG NEG
29 URG AMA TRA 6.0 1.005 NEG NEG NEG NEG NEG NOR NEG NEG
30 UTIA AMBAR LT 6.0 1.025 25 NEG NEG NEG 20 NOR 0.5 0.2
31 INT AMA TRA 5.5 1.015 25 NEG 100 30 NEG 6.0 6 0.2
32 EXT AMA TRA 7.0 1.010 NEG NEG 10 NEG 10 NOR NEG NEG
33 URG AMA TRA 7.0 1.010 NEG NEG NEG NEG NEG NOR NEG NEG
34 URG AMA TRA 5.5 1.010 NEG NEG NEG NEG NEG NOR NEG NEG
35 UTIA AMBAR TURB 6.0>1.030 25 NEG 30 NEG 10 NOR 2 0.5
36 EXT AMA TRA 6.5 1.020 NEG NEG NEG NEG NEG NOR NEG NEG
37 UTIA AMBAR TUR 5.5>1.030 75 NEG 100 30 10 12 3 0.2
38 EXT AMA TRA 6.5 1.020 NEG NEG NEG NEG NEG NOR NEG NEG
39 EXT AMA TRA 5.0 1.015 NEG NEG NEG NEG NEG NOR NEG NEG
40 EXT AMA TRA 7.0 1.015 NEG NEG NEG NEG NEG NOR NEG NEG
Numero de muestraEritrocitos/mL Células/mL Cilindros/mL Leucocitos/mL cristales Bacterias
1 3 12 0 3 NSO MOD
2 1 5 0 2 NSO ESC
3 2 25 0 3 NSO MOD
4 0 15 0 2 OX. DE CALCIO MOD ESC
5 0 3 0 3 NSO ESC
6 0 4 0 5 NSO ESC
7 20 10 HIALINO 1 20 NSO ESC
8 2 7 0 3 NSO ESC
9 3 5 0 6 NSO MOD
10 1 3 0 2 NSO ESC
11 1 2 0 15 NSO MOD
12 0 1 0 3 NSO ESC
13 0 3 0 3 NSO ESC
14 2 8 0 35 NSO ABUN
15 1 5 0 5 NSO ESC
16 0 4 0 50 NSO ABUN
17 0 10 0 12 NSO ESC
18 20 15 0 83 NSO ABUN
19 42 20 0 4 URATO AMORFO ABUNDANTE ESC
20 0 7 0 2 NSO ESC
21 3 5 0 5 NSO ESC
22 63 18 GRANULOSOS 3 6 FOSFATO AMORFO ABUN ESC
23 1 5 0 1 NSO ESC
24 3 23 HIALINO 2 4 NSO MOD
25 3 12 0 48 NSO ABUN
26 2 17 GRANULOSOS
5
5 OX. CALCIO MOD MOD
27 26 8 0 13 NSO ESC
28 2 4 0 4 NSO ESC
29 1 3 0 3 NSO NSO
30 16 14 0 20 NSO ESC
31 30 23 GRANULOSOS 3 17 NSO ABUN
32 2 7 0 5 NSO NSO
33 0 3 0 2 NSO ESC
34 1 5 0 3 NSO ESC
35 23 12 0 13 NSO ESC
36 0 5 0 6 NSO ESC
37 37 15 GRANULOSOS 3 36 URATO AMORFO ABUNDANTE MOD
38 0 2 0 3 NSO ESC
39 0 1 0 1 NSO ESC
40 0 3 0 2 NSO ESC

18. Imagen 1. Reporte en sistema Infolab WEB
Imagen 2. Modificación de rubros a reportar en sistema Infolab WEB
18
Corrección valores de referencia y
unidades

19. 19
Imágenes de muestras analizadas
Eritrocito eumórfico
Cilindro céreo
Cristales amorfos
(urato) Eritrocito eumórfico Célula de urotelio
Eritrocito
dismórfico
Eritrocito eumórfico
Cristales amorfos
(urato)
Célula de origen
tubular renal
Células de urotelio
Célula de uretra
(intermedia)
Mucina
Célula de uretra
superficial

20. 20
Célula de
Origen uretral
Cilindro granuloso
Cristales de oxalato de
calcio
Bacterias
Leucocitos
Piocito /podocito
Eritrocito
dismórfico
Eritrocito eumórfico
Cilindro granuloso

21. DISCUSION
La metodología utilizada para el análisis de rutina del sedimento urinario depende
directamente de las habilidades del operador, careciendo, en general, de un método
estandarizado intra e inter laboratorios para tal fin. Lo anterior debido a la subestimación del
examen general de orina, como un estudio sencillo, rápido, de poco costo pero que nos
puede dar información relevante para el diagnostico y tratamiento del paciente.
Existen trabajos donde se intenta evaluar el control de calidad interno en un sistema
automatizado, el sistema Kova y el método manual (25-26). Otros evalúan a los
21
Levaduras
Células de origen
uretral
Oxalato de
calcio
Leucocitos
“destellantes de
Schilling”

22. profesionales responsables de este análisis, el uso de procedimientos estandarizados y la
competencia técnica dentro de un determinado rango de acción (27).
En el presente trabajo se ha tratado de implementar como mejora de proceso e inicio de la
estandarización del análisis general de orina el empleo de la técnica de tinción con colorante
Sternheimer-Malbin, comenzando por la capacitación en el reconocimiento de estructuras y
células presentes en sedimento urinario. Se llevó a cabo en 40 muestras de pacientes
provenientes de todas las áreas hospitalarias, notando una diferencia clara entre los
sedimentos teñidos y los que no.
Por otro lado, se ha implementado el uso de Laminas múltiples Quick-Read
R
estas han sido
de gran utilidad para el análisis de la misma cantidad de muestra, así como la modificación
de rubros en el reporte emitido al médico, haciendo un análisis más profundo de las
estructuras o células, no solo por campo si no por microlitro de muestra. Teniendo como
base las metodologías reportadas en la literatura sobre el tema (24), fueron adaptadas y
modificadas de acuerdo con nuestras necesidades según se describe en materiales y
métodos
Los resultados obtenidos hasta el presente indican que se ha logrado un gran avance en la
familiarización de estructuras y tipos de células y por consiguiente una información
totalmente diferente al médico tratante, aunque hay mucho que trabajar todavía, desde el
seguimiento en la capacitación y compromiso diario, hasta el empleo de nuevos métodos
para lograr la estandarización completa del análisis.
La ventaja de emplear las láminas así como la técnica de tinción, es que son fáciles de
utilizar, económico y de fácil acceso.
CONCLUSION

De lo expuesto en el presente trabajo se puede concluir que se han cumplido los objetivos
propuestos:
La implementación de la técnica de tinción Sternheimer-Malbin, el inicio de un nuevo reporte
con los conocimientos adquiridos y que se siguen adquiriendo diariamente, así como la
finalidad de ir mejorando cada día la metodología, hasta alcanzar la estandarización del
22

23. análisis de orina. Por otro lado una colección fotográfica del sedimento facilitaría la
capacitación y enseñanza del nuevo personal, tarea que con el presente trabajo se realizará.
Lo ideal es encontrar una metodología que nos permita mejorar mucho más el análisis de
orina y con ello una estandarización en todas las etapas del proceso.
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-31
26