NEMATODOS FITOPARASITOS.pdf

nemátodos

1. Universidad de Buenos Aires
Facultad de Ciencias Exactas y Naturales
Departamento de Biodiversidad y Biología Experimental
Fitopatología
Nematodos fitopatógenos
(decimoquinta edición)
MATERIAL DE DOCENCIA
SÓLO USO INTERNO
por Daniel E. Nahabedian D.C.B., 
[email protected]
2012
=

2. Nematodos fitopatógenos
01
Introducción
Hasta aproximadamente mediados del siglo pasado (siglo XX), el estudio de 
los nematodos 
no constituyen una materia coherente
, debido a que su 
estudio estaba condicionado al hábitat. Así encontramos estudios sobre 
especies edáficas, marinas, zooparásitas, fitoparásitas, por separado.
Estos animales eran 
estudiados en forma 
separada por cada grupo 
de investigadores.
Alrededor 
de 1950
Varios autores reúnen los 
conocimientos básicos y se 
comienza el estudio racional 
de estos animales. 
Tres
acontecimientos acrecentaron la necesidad de estudio sobre nematodos.
1) Especialización regional
de cultivo de plantas (
monocultivos
) 
=> 
esto hizo
más evidente el ataque de nematodos
.
2) Selección y mejoramiento de variedades de plantas más productivas
=> 
pero menos resistentes a nematodos
.
3) La circulación de plantas y productos vegetales
sin control 
=> 
dispersión de distintas especies de nematodos
.
Consecuencias
: 
Las especies de nematodos se volvieron cosmopolitas y muy bien adaptadas a 
cultivos específicos.
=
Homogeneidad 
morfológica
En la segunda mitad del siglo XX se descubren la mayoría de las especies fitoparásitas.

3. Morfología básica:
02
Repaso:
Animales bilaterales, triploblásticos, 
protostomiados, pseudocelomados. 
Son gusanos filiformes, no segmentados, de sección 
cilíndrica, que miden entre 0,3 y 4 milímetros de 
largo por 0,01 por 0,5 milímetros de ancho.
Boca
Cavidad 
bucal
Faringe 
muscular
Glándulas 
faríngeas
Intestino
Recto
Ano
Glándulas 
excretoras
Sistema 
reproductor
Intestino
Sistema excretor 
glandular con canales de 
drenaje laterales.
Anillo nervioso 
circumentérico
Vulva
Cloaca
=
Hembra
Macho
Phylum: Nematoda (Gusanos cilíndricos)

4. Morfología básica:
03
Anatomía
Cutícula gruesa
con papilas sensitivas y 
órganos quimiorreceptores.
Sistema nervioso
: anillo nervioso 
circumentérico y cordones nerviosos 
dorsal y ventral, por dentro de pliegues 
longitudinales epidérmicos.
Corte transversal de 
Ascaris sp.
Sistema excretor 
glandular con 
canales de 
drenaje laterales
, 
por dentro de 
pliegues 
longitudinales 
epidérmicos.
Peculiaridad anatómica
: 
las células musculares 
(sólo longitudinales), 
poseen proyecciones 
citoplasmáticas hacia los 
cordones nerviosos 
longitudinales, ventral y 
dorsal.
H – E 
60X
Intestino
Pseudoceloma
Epidermis
Con cuatro cordones o pliegues epidérmicos
=
P

5. 04
=
Músculo retractor
Sistema 
reproductor 
macho
Intestino
Recto
Testículo (1)
Espermiducto 
muscular
Espermiducto glandular
Espermatogonias
Vesícula seminal
Cloaca
Espículas 
(2)
Gobernáculo
Estructuras 
sensoriales
Sistema reproductor 
hembra
Ovarios (2) Oogonias Intestino Huevos (cigota 
encapsulada)
Puede haber uno o 
generalmente dos 
ovarios.
Receptáculo seminal
Útero Gonoporo femenino (vulva) Oviducto
Hembra con tres orificios: 
boca, vulva y ano
Macho con dos 
orificios: boca 
y cloaca
Sistema reproductor:

6. Adaptaciones I
05
¿Qué hace a un nematodo fitoparásito?
Nematodos 
parásitos de 
vertebrados
Nematodos marinos
B) 
Adaptaciones 
en el ciclo de 
vidaLas adaptaciones se  pueden enmarcar en 
dos características
:
A) 
Modificación 
del sistema 
de obtención 
del alimento.
=
El grupo es de abolengo marino
Nematodos 
parásitos de 
plantas
Nematodos de 
vida libre
(tierra – agua)
Nematodos que pueden aparecer 
en la tierra (fitoparásitos + los de 
vida libre + los zooparásitos)
Porcentajes 
de especies
Nematodos 
parásitos de 
invertebrados
8360
4070
6610
4110
3500
Pueden llegar 
hasta un 40%
Adaptación

7. Clase Adenophorea, 
Orden DORYLAIMIDA
Clase Secernentea 
Orden TYLENCHIDA
A1) Estilete bucal
(dos sistemas). 
Adaptaciones II
06
A) Modificación del sistema de obtención del alimento.
A1b) Aguja A1a) Tubo hueco
Musculatura 
protractora
¿Cómo comen?
Los estiletes sólo se encuentran 
en los nematodos fitoparásitos.
Sólo tubo huecoSólo tipo aguja
Musculatura 
protractora
Trichodorus
Dorylaimus
=
P

8. A2a) Musculatura Faríngea.  Adaptaciones III
07
A) Modificación del sistema de obtención del alimento.
Procorpus 
Metacorpus 
(bulbo 
medio)
Istmo
Postcorpus
Glándulas faríngeas 
(una dorsal y dos 
ventrolaterales).
Anillo nervioso 
circumesofágico
Intestino
Estilete
Faringe
Doble 
bomba
Ditylenchus
, ataca a la cebolla, 
y produce una licuefacción de 
los tejidos.
A2b) Glándulas faríngeas. 
No sólo los fitoparásitos 
presentan glándulas faríngeas.
Estilete
Bulbo 
faríngeo 
medio
A2) Faringe
(esófago). 
Secreción “salivar”: posee auxinas, 
enzimas digestivas (celulasa, quitinasa, 
invertasa) y enzima proteolíticas 
(protopectinasa). 
Existe una muy estrecha vinculación 
entre la composición “salivar” y la 
relación planta - huésped.
La faringe
como las 
glándulas faríngeas
no son considerados 
como elementos 
diferenciadores 
para la taxonomía.
=
P

9. B1) Modificación del ciclo de vida: Adaptaciones IV
08
B) Adaptaciones en el ciclo de vida
¿Cómo viven?
Ciclo de vida normal general
:
1° juvenil
2° juvenil
3° juvenil
4° juvenil
Adulto
Huevo
1° Muda 2° Muda 
3° Muda 
4° Muda
Reproducción 
sexual
Eclosión
El ciclo evolutivo de especies de 
vida libre
esta entre: uno 
corto
de 
aproximadamente 
1 mes de duración
, hasta 
largo
de 
3 o 4 meses de duración
.
En las especies parásitas
de plantas se encuentran ciclos de vida cercanos 
al año de duración
, coincidentes con el ciclo anual de los hospedadores.
La fecundidad
de los 
nematodos fitoparásitos
es generalmente 
superior
a la fecundidad de las 
formas de vida libres
, pero 
inferior
a la fecundidad de las 
especies zooparásitas
.
Huevo 
embrionado
=
Objetivo
: Conservación y sobrevida
B1a) Alargamiento:
B1b) Aumento de 
la producción de 
huevos.

10. La conservación
de la especie durante la ausencia de la planta - vector esta 
favorecida por adaptaciones particulares
.
B2) Enquistamiento larvario: Adaptaciones V
09
¿Cómo se defienden?
En 1743 Turberville Needham (1713 - 1781), descubre en granos de trigo, 
unos gusanos que llamó “anguilas”. Primera cita de nematodos fitoparásitos.
Explicación
: Los juveniles 
quedan envueltos en la muda 
del estado anterior. 
En 1771, Baker, trabajando sobre los mismo granos de trigo, del herbario de 
Needham, encuentra los mismos animales descriptos y los llama 
Anguina 
tritici
. 27 años después. 
Se ha contado hasta 39 años en 
Tylenchus polyhyonus
. 
Sólo los 
juveniles son los que sobreviven.
Muda anterior
Juvenil 
enquistado
=
Anhidrobiosis 
o Anabiosis.

11. Retención de huevos por la hembra.
B3: Enquistamiento de la hembra. Adaptaciones VII
10
¿Quién más se enquista?
Meloidogyne
Heterodera
Hembra 
madura
Pasa de una 
forma filiforme
a una 
forma globosa
Hembra grávida
Hembra 
grávida
Se produce por una oxidación 
de los polifenoles de la cutícula.
6 años, con una 
apreciable sobrevida
Protección 
de huevos
=
Quiste

12. B4: La protección de los huevos.
Glándula rectal
Adaptaciones VIII
11
¿De qué otra forma 
protegen a los huevos?
Los huevos pueden ser puestos, por la hembra, en un saco de protección, 
llamado 
matriz
, 
saco
o 
masa gelatinosa.
Está formada por la 
secreción de un mucoide
, que lo 
secreta las 
glándulas rectales
. 
Se presenta en 
Heterodera spp
., 
Meloidogyne spp
. y en 
los tilénquidos nacóbidos.
Matriz, saco o 
masa gelatinosa
Saco de 
protección
Aísla al 
embrión del 
medio en 
forma eficaz, 
lo protege 
de la 
desecación y 
hasta del 
sulfuro de 
carbono. 
=

13. Resumen: Adaptaciones 
12
B) Adaptaciones en el ciclo de vida.
A) Modificación del sistema de obtención del alimento.
A1) Estilete bucal (dos sistemas). 
A1a) Tubo hueco.
A1b) Aguja.
A2b) Glándulas faríngeas (esofágicas). 
Conservación y 
sobrevida. 
B1a) Alargamiento.
B2a) Enquistamiento larvario.
B2b) Enquistamiento de la hembra.
B2c) La protección de los huevos.
A2a) Musculatura faríngea (esofágica). 
A2) Faringe (esófago). 
=
B1) Modificación del ciclo de vida
B2) Protección.
B1b) Aumento de la producción de huevos.
Perforación de la 
pared celular
Absorción de 
fluidos

14. Nutrición:
13
1) Saprófagos
: 
3) Fitoparásitos
: 
2) Depredadores
: 
Tres
formas alimentación:
Especies que necesitan 
alimento líquido
, contenido celular o
Nematodos que ingieren partículas de 
materia orgánica
. 
Especies que se alimentan de 
bacteria
, 
hongos
y 
algas
Desde el punto de vista del tipo de materia orgánica
consumida, se pueden 
dividir en:
Materia 
orgánica no estructurada
.
Materia 
orgánica estructurada
.
Saprófagos
Depredadores
Fitoparásitos
=
Aspectos Ecológicos: pequeñas
(la mayoría de los nematodos del suelo) (
Devoradores de 
microbios
) y las que se alimentan de organismos relativamente grande como
protozoos
, 
nematodos
, 
rotíferos
, etc. (
Depredadores, propiamente dichos
).
jugos vegetales obtenidos por perforación de las raíces o de las paredes 
celulares.
(viva o muerta)
Humedad:
Capacidad 
de campo
Punto de marchitamiento 
permanenteSeco total
Vida normal
Anhidrobiosis
Inundado
Enquistado
Hay una relación ajustada entre la 
cantidad de nematodos
y la 
proporción de humedad
. 
La cantidad de agua que rodea las partículas del suelo, debe estar presente en 
cantidades que permita el 
desplazamiento
de los animales. 

15. Importancia Ecológica
: 
- Producción primaria
- Descomposición primaria
- Nivel de depredación
14
Los fitoparásitos puede alcanzar 50% del total de nematodos del suelo. Se encuentran en los primeros 15 centímetros de profundidad del suelo. 
Decayendo el número cerca de la superficie y con la profundidad.
Generalmente, los que se 
alimentan de bacterias
se presentan en gran 
número en los 
campos con estratos arbóreos
, en los montones en 
descomposición (
compost
) y los que se 
alimentan de plantas
se presentan 
generalmente en los 
prados y otros hábitat con vegetación densa
. 
Dependiendo de las 
condiciones ambientales
, se puede encontrar entre 
4 y 16 
gramos de nematodo, por metro cuadrado de suelo
; las cifras calculadas de 
nematodos, puede trepar hasta los 
12 millones de individuos
. Los nematodos 
no
pueden cambiar las propiedades físicas de los suelos como hacen las 
lombrices.
Bajan efectos de otras especies de metazoos. Destruyen una parte de materia orgánica
formada.
Consumen organismos muertos 
(aceleran procesos de degradación).
Consumen bacterias y hongos degradadores 
(detienen los procesos de degradación).
=
Distribución:
Acción:
Es debida a la estructura
y composición
química
del suelo, temperatura
, humedad
y pH
.

16. Ciclos de Vida I
15
(hacia una clasificación general)
Lugar
Sistema radicular
Partes aéreas
Elementos a tener en cuenta:
=
Condición
Ectoparásitos 
Semiendoparásito
Endoparásito 
Endoparásito 
Secundariamente Semiendoparásito 
Actitud en la dispersión
Juveniles Sedentarios
Juveniles Migradores
Hembras
Forma filiformes
Forma globosas
Puesta
Fuera del hospedador 
Dentro del hospedador
Hembra enquistada

17. Ciclos de Vida II
Ectoparásito  Endoparásito
Semiendoparásito
Puesta externa
Semiendoparásito
Endoparásito
Puesta externa
Endoparásito
Puesta interna
Puesta 
externa
16
Formas
Ejemplos:
Hembra 
“enquistada”
=
Estilos 
parasitarios
Lugar de la 
puesta
Endoparásito, secundariamente semiendoparásito

18. Ciclos de Vida III
17
A clasificar
1: Ectoparásitos
1.1.: Sistema radicular
1.1.1.: Migradores
Doriláimidos 
(todos):
(
Xiphinema
, 
Longidorus 
y 
Trichodorus) legumbres de 
huerta.
Tilénquidos:
(
Dolichodorus 
y 
Belonolaimus) pinos, árboles 
frutales y cultivos 
diversos.
Estiletes muy largos
Son polífagos, no específicos
Ciclos de vida cortos (meses)
No quedan 
estacionarios
Daños 
generalizados
Atacan los 
distintos 
estados del 
ciclo de vida
Nivel de 
Orden
=
Adultos
Juveniles
Este Orden es 
indicador de suelos 
no modificados

19. Tilénquidos:
Familia CRICONEMATIDAE 
(
Criconema
, 
Criconemoides
, 
Hemicycliophora
, 
Cacopaurus
)
hortalizas, florales y 
leñosas.
y PARATYLENCHIDAE
(
Paratylenchus pulula
)
plantas de ananá
Rodean a las radículas y 
quedan estacionarios
Ciclos de Vida IV
18
Más quietos
1: Ectoparásitos
1.1.: Sistema radicular
1.1.2.: Sedentarios
Tendencia a perder el estilete, en 
machos y juveniles
No son polífagos, son algo específicos
Ciclos de vida largos (meses)
Nivel de 
Familia
=
Esta Familia es 
indicadora de 
suelos modificados 
antrópicamente

20. Anguina tritici (trigo) Anguina agrostis
, 
A
. 
pustulicola
y 
A. graminophila
El adulto se puede 
desplazar por la 
planta (cereal)
Migradores juveniles obligados en 
el segundo estadio larval.
Ciclos de Vida V
19
Hacia arriba
1: Ectoparásitos
1.2.: Partes aéreas
1.2.1.: Migradores
Eventualmente 
(madurez sexual) 
penetran y hacen 
“agalla” aéreas.
Distribución pasiva de las larvas por 
rotulación del hombre.
Suben por 
plántulas y 
permanecen como 
ectoparásitos.
Un sólo Género
Ciclo sincronizado con 
el ciclo de vida de la 
planta
Muy 
específico
“agalla”
=

21. El adulto no
se 
desplaza por la planta
Ditylenchus
spp. 
(alfalfa, arroz y plantas 
con bulbos
). 
Aphelenchoides
spp. 
(crisantemo, narciso, 
fresias, orquídeas y 
arroz). 
Tylenchus
spp. 
(cítricos, muguete). 
Rhadinaphelenchus
cocophilus
(cocoteros
). 
Bursaphelenchus xylophilus
(nematodo 
de la madera de pino)
.
No 
desarrollan 
agallas.
Migradores juveniles no obligados.
Ciclos de Vida VI
20
específicos y no tan específicos
1: Ectoparásitos
1.2.: Partes aéreas
1.2.2.: Sedentarios
Son polífagos, no 
específicos.
Muchas generaciones 
en un año.
Se ubican en 
región subcortical
Producen 
pudriciones, 
cortan la 
circulación
Varios 
Género
=
El juvenil es 
temporalmente 
ectoparásito, 
penetra en la planta

22. Subfamilia HOPLOLAIMINAE:  Hoplolaimus
(cereal, caña de 
azúcar, alfalfa);
Rotylenchus
(plantas 
tropicales); 
Scutellonema
y 
Helicotylenchus
(plantas 
bajas).
Tylenchorhynchus (tabaco, cereal, algodón). 
Ciclos de Vida VII
21
Empezamos otra vez
2: Semiendoparásitos
2.1.: Migradores
Estos animales penetran parcialmente en los 
tejidos del hospedador para nutrirse. Se 
localizan especialmente en la zona epidérmica 
(cortical) del sistema radicular
. 
Hay una tendencia al 
endoparasitismo. 
Las hembras 
son filiformes
y sólo penetran la corteza de las 
raíces cuando están maduras. Cambian de lugar.
Son polífagos en general. 
Cuando son juveniles migran y viven 
prácticamente como ectoparásitos.
Cuando las condiciones son adecuadas se multiplican por 
miles rápidamente. 
=

23. TYLENCHULIDAE:  Tylenchulus semi-penetrans (cítricos
); 
Rotylenchulus
reniformis
(leguminosas); 
También 
Heterodera spp.
y 
Meloidogyne spp
. 
Ciclos de Vida VIII
22
¿Más polífagas?
2: Semiendoparásitos
2.2.: Sedentarios
Cosmopolitas.
La parte 
posterior se 
hipertrofia
Con puesta de 
huevos en el 
exterior de la 
corteza
Son polífagas 
dentro de un 
grupo de plantas 
similares
Luego de la cópula, la 
hembra 
penetra en el tejido vegetal 
para alimentarse por poco 
tiempo
, 
pierde la forma 
filiformey sale para colocar la 
puesta.
Masa 
gelatinosa
=
F!

24. Nacobbus 
(maní)
Con modificaciones del cuerpo.
La hembra saca sólo el extremo 
posterior del cuerpo 
en el momento 
de poner los huevos
.
Ciclos de Vida IX
23
¿No son semiendoparásitos?
3: Endoparásitos
3.1.: Puestas externas
Masa gelatinosa
=

25. Tilénquidos: Pratylenchus
, 
Pratylenchoides
y 
Radopholus similis (banana). 
sin modificación 
del cuerpo.Ciclos de Vida X
24
¿Otra vez filiformes?
3: Endoparásitos
3.2.: Puestas internas
Específicos
=
Hembras filiformes

26. Meloidogyne sp
. 
La hembra pasa mucho tiempo como endoparásito.
Las hembras pueden ser notadas en las agallas o 
nódulos de la raíz antes de poner.
Ciclos de Vida XI
25
¿Cómo, salen otra vez?
4: Endoparásitos, secundariamente semiendoparásitos
4.1.: Puestas externas
Masa gelatinosa
=
(sobre hortalizas, vid, cereales)

27. Heterodera glycines (soja
)
Heterodera spp
.
(papa)
Ciclos de Vida XII
26
Al fin
4: Endoparásitos, secundariamente semiendoparásitos
4.2.: Enquistamiento
Los tejidos vegetales pueden desarrollar agallas
La larva infectiva es el 
segundo estadio larvario
Las hembras son 
fecundadas y aumentan 
de tamaño, quedando 
como pequeños quistes
, 
en la zona cortical o 
subcortical.
=

28. Resumen: Ciclos de Vida
27
1: Ectoparásitos
1.1.: Sistema radicular
1.1.1.: Migradores
1.1.2.: Sedentarios
1.2.: Partes aéreas
1.2.1.: Migradores
1.2.2.: Sedentarios
2: Semiendoparásitos
2.1.: Migradores
2.2.: Sedentarios
3: Endoparásitos
3.1.: Puestas externas
3.2.: Puestas internas
4: Endoparásitos, 
secundariamente semiendoparásitos
4.1.: Puestas externas
4.2.: Enquistamiento
=
.
.
.

29. Síntomas I (daño). 1) Alteraciones en las partes aéreas:
CLOROSIS
28
¿Qué hacen?
DIRECTO INDIRECTO
Aphelenchoides spp.
Anguina spp.
Asociado con 
animales que 
atacan desde el 
suelo.
Necrosis locales por falta de 
irrigación, formación de 
agallas y ataque directa a 
meristemas.
=
Hoja atacada en 
las nervaduras
Hoja 
normal

30. d) Malformaciones:Síntomas II (daño).
29
¿Y en la raíces?
2) Alteraciones del sistema radicular (directo):
No confundir
Raíces erizadas 
(stubby root)
Raíces rugosas 
(coarse root)
Raíces curvadas 
(curly tip)
a) Raíces con nódulos 
(
Meloidogyne
, 
Nacobbus
)
b) Pudriciones o Necrosis superficial 
(
Xiphinema
, 
Tylenchus
, 
Helicotylenchus
)
c) Pudriciones o Lesiones internas 
(
Platylenchus
, 
Rodophorus
)
Nódulos de 
Rhizobium
Soja
Agallas de nematodos
=

31. Tejido atacado
Raíz atacada Raíz normal
Delaminación
Tejido hipertrofiado
b
a
Síntomas III (daño).
30
¿Y en los tejidos?
3) Reacciones histológicas de los vegetales:
a) Reacciones de defensa y aislamiento.
b) Hipertrofia del tejido parenquimal.
=

32. c
Masa de nematodos
Necrosis
Meristema 
modificado
Síntomas IV (daño).
31
Más
3) Reacciones histológicas de los vegetales:
=
c) Necrosis.
d) Formación de agallas en 
tejido diferenciado.
d

33. Hoja 
modificada
Hoja 
normal
Nervadura 
modificada
Nervadura
normal
Hipertrofia
Síntomas V (daño).
32
Y más 
3) Reacciones 
histológicas en 
los vegetales:
=

34. Resumen: Síntomas
33
1) Alteraciones en las partes aéreas:
DIRECTO
INDIRECTO
2) Alteraciones del sistema radicular:
d) Malformaciones:
a) Raíces con nódulos
b) Pudriciones o Necrosis 
superficial
c) Pudriciones o Lesiones 
internas
d) Formación de agallas en tejido diferenciado.
3) Reacciones histológicas de los vegetales:
a) Reacciones de defensa y aislamiento.
b) Hipertrofia del tejido parenquimal.
=
c) Necrosis.
Raíces erizadas
Raíces rugosas
Raíces curvadas

35. Síntomas en cultivos:
33
2) Raleo:
=
2) Manchas de secado:
1) Debilitamiento:

36. Ejemplo
: 
Se ha demostrado la inoculación 
del Virus del tabaco es debido a 
Trichodorus spp
. y a 
Xiphinema 
spp
. El Virus del anillo negro del 
tomate, que también ataca a la 
lechuga y a la remolacha es 
transmitida por 
Longidorus spp.
Modificaciones en la fisiología del hospedador
CLOROSIS
1) Disminución de la posibilidad de absorber ciertos minerales.  Interacciones con otros agentes patógenos.
34
¿Cómo actúan?
El ataque directo al sistema radicular trae aparejado 
problemas en el transporte de sustancias.
Falta de agua Falta de nutrientes
Daño mecánico
Camino para la infección
De virus, bacterias, 
hongos y otros nematodo.
SINERGISMO
Tamaños
=
2) Disminución de la vitalidad de reproducción. 
1. Virus
2. Bacterias
3. Micoplasmas
4. Protistas
5. Hifa de hongos
6. Nematodos
1
2
3
4
5
6
Pared 
celular
Núcleo
Pérdidas
: entre el 
10% (países 
desarrollados) y 15% 
(no desarrollados)
(complejos patogénicos)

37. Acción del hospedador sobre los nematodos.
35
=
Primero hay que definir tres palabras utilizadas indistintamente:  Resistencia
: es la 
acción
de la planta sobre la 
reproducción del nematodo
. Una 
planta 
resistente
no permite la reproducción del nematodo.
Tolerancia
: se limita a los 
perjuicios
medidos como los 
síntomas y daños
producidos. 
Una 
planta tolerante
no muestra señales, ni síntomas, ni daños, de la infección por 
nematodos. 
Incompatibilidad
: son los 
mecanismo fisiológicos
que impiden el normal desarrollo de 
los nematodos. Una 
planta incompatible
no admite el desarrollo de los nematodos en 
su medio interno.
¿Cómo 
resisten?
1) Plantas absolutamente resistentes.
2) Plantas parcialmente resistente.
a) las larvas no se desarrollan.
b) las larvas se desarrollan pero se arrestan en un estadio.
c) las hembras son poco numerosas y poco prolíficas.
3) Plantas sensibles, las hembras son prolíficas.
Resistencia:
Tolerancia:
Incompatibilidad:
El hospedador puede incidir sobre el desarrollo de los parásitos, mediante su fisiología, 
regulación metabólica, la producción de sustancias tóxicas o por vía inmunitaria.
La tolerancia se debe en forma directa 
al daño producido, dependiendo en 
forma directa de la relación planta -
nematodo.

38. Métodos de control:
36
¿Cómo se “lucha”?
Control biológico
: otros nematodos, protistas (microsporidios) y hongos (hipomicetes).
Control gubernamental
: regulación de la introducción y la diseminación de granos y 
plantas por medio de leyes internacionales.
Control químico
: Se aplican en cultivos de alto valor. A. fumigantes del suelo (gas): 
[1,3 dicloropropeno (Telone II), cloropicrina (gas lacrimógeno), y dazomet (Basamid) 
bromuro de metilo]. B. no fumigantes (líquido o sólido): fenamifos (Nemacur) y 
aldicarb (Temik); son insecticidas (venenos nerviosos), no son tan efectivos.
Control Físico (tratamiento por calor)
: inyección de vapor a altas temperaturas.
Métodos culturales
: cuarentenas; barbecho; desecación; rotación de cultivo; utilización 
de razas resistentes; aislamiento del borde; inundación; eliminación de otras plantas; 
recuperación del suelo, etc. 
Problemática actual:
Siembra directa.
Sebos vegetales.
A. Límites de tolerancia: nemátodos por 100 g de suelo. 
B. Umbral económico (UE): cantidad de nematodos donde se debe iniciar el control.
C. Nivel de Daño Económico (NDE): cantidad de nematodos, cuando el rinde es igual a 
los gastos. Realizar el tratamiento es aumentar los gastos.
=
.
.
.
Solarización, secado.
Biofumigación, aumento de la 
materia orgánica.
Plantas nematicidas.
Portainjertos resistentes, para 
nematodos que atacan raíces.
UE
NDE
n°
t

39. Muestreo I
37
¿Cómo se muestrea?
Muestreo en campo
:
Sacabocado
Se debe hacer una 
cuadrícula de muestreo
, teniendo 
presente que los lugares deben estar distribuidos en 
forma 
pareja
sobre el 
total
del terreno y estar 
dispuestos al 
azar
. 
Se pueden agregar muestreos
pilotos, indicativos o siguiendo un interés particular.
La muestra se debe mantener “viva”, no fijarla y protegerla del exceso 
de calor o frío. Se puede mantener a 4 °C (heladera).
Se puede considerar muestra a 
restos vegetales, o raíces de plantas 
supuestamente atacadas. 
Levantar los datos necesarios 
(fecha, lugar, especie, 
ubicación, etc.). 
Estas se tomarán en forma delicada, 
tratando que los terrones de tierra 
queden adheridos a ellas.
Lo ideal es acondicionar la muestra en bolsitas 
de plástico, herméticas; tratando de dejarles 
una “trampa de aire”, para que no se consuma 
el oxígeno y pueda protegerse de accidentes 
mecánicos
=
¿Qué busco?
Se trata de encontrar los 
daño
característicos, 
agallas
o 
nódulos
típicos, los 
nematodos
mismos o los 
quistes
(hembras enquistadas).

40. Muestreo II
38
Orden !!!!!!!!! 
Muestreo en campos cultivados:
Patrón para el 
muestreo doble en 
cultivos 
frutales
y 
forestales
.
Detalle
Una muestra 
cercana al tronco y 
otra en el borde de 
la cobertura de 
hojas.
Guarda recta y en zig-zag.
=
P

41. Embudo de 
Baermann
Separación
39
Luego del muestreo
Embudo de 
vidrio o 
plástico
Manguera 
de goma
Muñeca
Estativo
Líquido
Pinza
Caja de 
Petri
De 24 o 48 horas
Lámpara
(Con tierra o 
raíces)
También, en el 
embudo se 
puede colocar 
un vaso de 
precipitado 
invertido, 
cubierto con 
una red y 
ajustado con 
una banda de 
goma.
=

42. Observación
in vivo
Lavado y 
filtrado
fijado
Aparato de 
Baermann
Separación de nematodos vivos del suelo y 
confección de preparados temporales.
t
Aclarado en 
lactofenol puro
Montado 
y sellado
Observación 
in toto
40
Procedimiento general
Ver el apartado 
de Concentración
=
Determinación

43. 2) Filtrado grueso
1) Preparación de la muestra
Concentración I
41
Filtrado diferencial
3) Filtrado fino
Muestra de 
tierra o raíces.
Morterear 
levemente 
con agua
Descartar
Filtro de 4 
milímetros de 
diámetro
Descartar
Filtro de 150 
micrómetros 
de diámetro
4) Lavado del filtro
Se acondiciona 
en un vaso de 
precipitado
=
Conservación a 
4°C

44. 1) 1° centrifugaciónConcentración II
42
Centrifugado diferencial
Centrifugar a 
3000 R.P.M. 4 
minutos.
Descartar el 
sobrenadante
Resuspender el 
precipitado 
con una 
solución de 
45,5 % de 
azúcar
2) 2° centrifugación
Centrifugar a 
3000 R.P.M. 2 
minutos.
Nematodos 
limpios
Filtro de 150 
micrómetros 
de diámetro
Descartar el 
precipitado
Luego del 1° y 2° paso del filtrado diferencial, de la pantalla 
anterior: muestra sin tierra gruesa.
Conservación a 
4°C
=
Filtrado 
y lavado 
del filtro

45. 43
Para planta 
supuestamente enferma
Mantenimiento y verificación de 
la presencia de fitoparásitos.
dilacerado
filtrado
lavado
4 °C
t
t
dilacerado
filtrado
lavado
Conservación a 4°C
Inóculo
Determinación
Planta 
de soja
t = no mayor a 
una semana
Filtro de 150 micrómetros 
de diámetro
=

46. Estudio de la penetración y ubicación de 
los fitoparásitos en la planta huésped.
Observación 
in vivo
t
Inóculo
1 hora
Semilla de 
tomate
Lámina de 
plástico gruesa
Lámina de 
plástico fina
44
Para tomate u 
otra planta
Caja de Petri
=

47. Anestesiado
.
Dos gotas de 
éter etílico
en 50 mililitros de 
agua declorada
, en frasco cerrado.
Desanestesiar en 
agua declorada
.
Fijación
.
- FAA: 2 mililitros de 
alcohol etílico
; 6 de 
formol
solución comercial; 
1 de 
ácido acético glacial
; 40 de 
agua destilada
.
-
Ácido acético glacial
al 0,5%, entre 60 y 80 °C. Pasar a solución de 
formaldehído
al 
5%, salado (36 por mil) y neutralizado pH 7. 
Procedimientos
45
Los nematodos admiten ser lavados dentro del tamaño del tamiz correspondiente, por 
soluciones de 
hipoclorito de sodio
al 2,5 % en solución acuosa (agua 
lavandina
diluida 
11 veces), durante 5 minutos.
Lavado
.
Observación. En cajas de Petri, para microscopio estereoscópico.
“En masa", con verde luz, azul de Nilo o azul de anilina.
Para preparados semidefinitivos: azul de algodón - lactofenol.
Coloración. 
Soluciones
=
Verificación de quistes (hembras grávidas)
.
Método del vaso
: se disgrega el suelo en agua y se mezcla bien. Se deja reposar y se 
coloca y se saca verticalmente y de forma rápida, un papel de diario junto a la pared 
del vaso. Los quistes quedan adheridos a él.
Método de la botella
: mediante un embudo se llena una botella con la muestra, se llena 
de agua hasta un 75% y se agita durante 5 minutos. Se deja reposar. Se agrega agua 
hasta el borde. Los quistes flotan en la superficie.

48. Clave I
46
Determinación (nivel alto) Estilete
Ausente Presente
Bulbo faríngeo medio
Ausente
Presente
Nematodos no parásitos
Nematodos parásitos de plantas
SECERNENTEA 
TYLENCHIDA
ADENOPHOREA 
DORYLAIMIDA
=

49. Clave II
47
Determinación (nivel bajo)
Tamaño
Pequeño (menos a 1 mm) 
Estilete corto y curvo
Grande (mayor a 1 mm) 
Estilete largo y recto
Engrosamiento basal del estilete
Presente Ausente
Trichodorus
Xiphinema Longidorus
ADENOPHOREA 
DORYLAIMIDA
doriláimidos
=

50. Clave III
48
Determinación (nivel bajo)
tilénquidos
SECERNENTEA 
TYLENCHIDA
Forma del cuerpo
Globoso Filiforme
Meloidogyne 
Heterodera 
Globodera
“Anillación”
Presente Ausente
Forma de la cola
Redondeada Aguzada
Raíz del estilete
Presente Ausente
Cricconemella
Hoplolaimus 
Belonolaimus 
Scutellonema
Aphelenchus
Tamaño
Grande 
(> a 1 mm)
Pequeño 
(< a 1 mm)
Hemicycliophora
Ditylenchus
Paratylenchus
Pratylenchus
Radopholus
=
.
.
.

51. Postulados de Koch
:
1. El agente patológico debe estar presente en 
cada caso de la enfermedad en las condiciones 
apropiadas y ausente en los organismos sanos. 
2. El agente no debe aparecer en otra 
enfermedad de manera fortuita o saprófita. 
3. El agente debe ser aislado del cuerpo en un 
cultivo puro a partir de las lesiones de la 
enfermedad. 
4. El agente debe provocar la enfermedad en un 
organismo susceptible al ser inoculado. 
5. El agente debe ser aislado de nuevo de las 
lesiones producidas en los organismos de 
experimentación. 
Louis Pasteur 
(1822-1895)
Robert Koch 
(1843-1910)
La Argentina tiene un déficit 
acentuado de estudios sobre 
nematodos.
Fitopatología 
Nematodos 
fitopatógenos
(decimoquinta edición)
Gracias
=
por Daniel E. Nahabedian D.C.B.
MATERIAL DE DOCENCIA
SÓLO USO INTERNO
En sí, en la Argentina se desconoce sobre la microfauna del 
suelo, su composición y su acción; cuál es la incidencia mutua 
entre los organismos del suelo y los cultivos; etc.